Физиология растений, 2023, T. 70, № 7, стр. 774-781

Содержание генциопикрозида в природных популяциях Gentiana cruciata L., произрастающих на территории Республики Татарстан

Л. З. Хуснетдинова a*, А. Н. Акулов b, С. А. Дубровная a, О. А. Тимофеева a, Р. М. Мухаметшина c

a Казанский (Приволжский) федеральный университет
Казань, Россия

b Казанский институт биохимии и биофизики Федерального исследовательского центра “Казанский научный центр Российской академии наук”
Казань, Россия

c Казанский государственный архитектурно-строительный университет
Казань, Россия

* E-mail: husnetdinova.l@mail.ru

Поступила в редакцию 27.07.2023
После доработки 19.10.2023
Принята к публикации 20.10.2023

Аннотация

Представлены результаты количественного исследования основного иридоида генциопикрозида, фенольных соединений и флавоноидов в надземных побегах, корневищах, а также в корнях растений горечавки крестовидной (Gentiana cruciata L.), собранных на территории естественных фитоценозов Алексеевского, Зеленодольского и Апастовского районов Республики Татарстан. Методом спектрофотомерии проведена оценка содержания фенольных соединений и флавоноидов в растительном сырье. Показано, что максимальное количество фенольных соединений и флавоноидов в надземных частях составляет 19.4 и 10.80 мг/г для Зеленодольского и Алексеевского районов, в корневищах и корнях – 8.53 и 1.96 мг/г для Апастовского района. Методом высокоэффективной жидкостной хроматографии показано, что максимальное количество генциопикрозида содержится в подземной части растений и составляет более 9%, тогда как для надземной части – около 6%. Таким образом, растения горечавки крестовидной, произрастающие в фитосообществах разных районов, отличались по содержанию биологически активных веществ, что, вероятно, обусловлено влиянием комплекса эколого-ценотических условий местообитаний. Результаты фитохимического анализа позволяют предложить Апастовский район Республики Татарстан как потенциальную площадку для сбора и заготовки лекарственного растительного сырья с высоким содержанием ключевого иридоида генциопикрозида.

Ключевые слова: Gentiana cruciata, генциопикрозид, фенольные соединения, флавоноиды

Список литературы

  1. Xu Y., Li Y., Maffucci K.G., Huang L., Zeng R. Analytical methods of phytochemicals from the genus Gentiana // Molecules. 2017. V. 22. P. 2080. https://doi.org/10.3390/molecules22122080

  2. Szücs Z., Dános B., Nyiredy S. Comparative analysis of the underground parts of Gentiana species by HPLC with diode-array and mass spectrometric detection // Chromatographia. 2002. V. 56. P. 19. https://doi.org/10.1007/BF02494108

  3. Hayta S., Gurel A., Akgun I.H., Altan F., Ganzera M., Tanyolac B., Bedir E. Induction of Gentiana cruciata hairy roots and their secondary metabolites // Biologia. 2011. V. 66. P. 618. https://doi.org/10.2478/s11756-011-0076-4

  4. Mirzaee F., Hosseini A., Jouybari H.B., Davoodi A., Azadbakht M. Medicinal, biological and phytochemical properties of Gentiana species // J. Tradit. Complement. Med. 2017. 7(4). P. 400. https://doi.org/10.1016/j.jtcme.2016.12.013

  5. Nadinic E., Penna C., Saavedra C., Coussio J., Gutkind G., Debenedetti S. Isolation of antimicrobial compounds from Gentianella achalensis (Gilg.) Ho & Liu (Gentianaceae) extracts // Lat. Am. J. Pharm. 2002. V. 21. P. 123. https://doi.org/10.1007/s10295-007-0210-z

  6. Kumarasamy Y., Nahar L., Cox P.J., Jaspars M., Sarker S.D. Bioactivity of secoiridoid glycosides from Centaurium erythraea // Phytomedicine. 2003. V. 10. P. 344. https://doi.org/10.1078/094471103322004857

  7. Chen L., Liu J.C., Zhang X.N., Guo Y.Y., Xu Z.H., Cao W., Sun X.L., Sun W.J., Zhao M.G. Down-regulation of NR2B receptors partially contributes to analgesic effects of Gentiopicroside in persistent inflammatory pain // Neuropharmacology. 2008. 54(8). P. 1175. https://doi.org/10.1016/j.neuropharm.2008.03.007

  8. Чжан Ц., Гончаров А.А., Ван Ц., Сунь Я. Исследование регенерации подземных органов горечавки шероховатой (Gentiana scabra Bunge) // Вестник Красноярского государственного аграрного университета. 2018. № 2. С. 224.

  9. Mihailović V., Mišić D., Matić S., Mihailović M., Stanić S., Vrvić M.M., Katanić J., Mladenović M., Stanković N., Boroja T., Stanković M.S. Comparative phytochemical analysis of Gentiana cruciata L. roots and aerial parts, and their biological activities // Ind. Crops Prod. 2015. V. 73. P. 49. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2015.04.013

  10. Olennikov D.N., Gadimli A.I., Isaev J.I., Kashchenko N.I., Prokopyev A.S., Kataeva T.N., Chirikova N.K., Vennos C. Caucasian Gentiana species: untargeted LC-MS metabolic profiling, antioxidant and digestive enzyme inhibiting activity of six plants // Metabolites. 2019. V. 9. P. 271. https://doi.org/10.3390/metabo9110271

  11. Самылина И.А. Фармакогнозия. Москва: Медицинское информационное агентство, 2011. 432 с.

  12. Venditti A., Frezza C., Maggi F., Lupidi G., Bramucci M., Quassinti L., Giuliani C., Cianfaglione K., Papa F., Serafini M., Bianco A. Phytochemistry, micromorphology and bioactivities of Ajuga chamaepitys (L.) Schreb. (Lamiaceae, Ajugoideae): two new harpagide derivatives and an unusual iridoid glycosides pattern // Fitoterapia. 2016. V. 113. P. 35. https://doi.org/10.1016/j.fitote.2016.06.016

  13. Toiu A., Mocan A., Vlase L., Pârvu A.E., Vodnar D.C., Gheldiu A.M., Moldovan C., Oniga I. Comparative phytochemical profile, antioxidant, antimicrobial and in vivo anti-inflammatory activity of different extracts of traditionally used romanian Ajuga genevensis L. and A. reptans L. (Lamiaceae) // Molecules. 2019. V. 24. P. 1597. https://doi.org/10.3390/molecules24081597

  14. Sun C., Wu Z., Wang Z., Zhang H. Effect of ethanol/water solvents on phenolic profiles and antioxidant properties of beijing propolis extracts // Evid. Based Complementary Altern. Med. 2015. Article ID: 595393. https://doi.org/10.1155/2015/595393

  15. Agati G., Tattini M. Multiple functional roles of flavonoids in photoprotection // New Phytol. 2010. V. 186. P. 786. https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.2010.03269.x

  16. Государственная фармакопея Российской Федерации. Москва: Научный центр экспертизы средств медицинского применения, 2005. С. 235

  17. Куцик Р.В., Зузук Б.М. Горечавка желтая (Gentiana lutea L.) (аналитический обзор) // Провизор. 2003. № 5. С. 21

  18. Боровик Т.С. Прибыткова Л.Н. Сравнительное исследование видов рода Gentiana, интродуцируемых в Западной Сибири // Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 2014. № 12. С. 33

  19. Weissenböck G., Reznik H. Änderungen des flavonoid – musters während der samenkeimung von Impatiens balsamina L. // Zeitschrift Pflanzenphysiologie. 1970. № 63. P. 114.

  20. Aberham A., Pieri A., Croom Jr.E.M., Ellmerer E., Stuppner H. Analysis of iridoids, secoiridoids and xanthones in Centaurium erythraea, Frasera caroliniensis and Gentiana lutea using LC-MS and RP-HPLC // J. Pharm. Biomed. Anal. 2011. V. 54. P. 517. https://doi.org/10.1016/j.jpba.2010.09.030

  21. Szücs Z., Dános B., Nyiredy S. Comparative analysis of the underground parts of Gentiana species by HPLC with diode-array and mass spectrometric detection // Chromatographia. 2002. V. 56. P. 19. https://doi.org/10.1007/BF02494108

  22. Zhang J., Zhang Z., Wang Y., Zuo Y., Cai C. Environmental impact on the variability in quality of Gentiana rigescens, a medicinal plant in southwest China // Glob. Ecol. Conserv. 2020. V. 24. https://doi.org/10.1016/j.gecco.2020.e01374

  23. Tovilovic-Kovacevic G., Zogovic N., Krstic-Milosevic D. Secondary metabolites from endangered Gentiana, Gentianella, Centaurium, and Swertia species (Gentianaceae): promising natural biotherapeutics // Biodivers. Biomed. 2020. V. 19. P. 335. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-819541-3.00019-0

  24. Yang Y., Zhao Y., Zuo Z., Zhang J., Shi Y., Wang Y. Investigation of a medical plant for hepatic diseases with secoiridoids using HPLC and FT-IR spectroscopy for a case of Gentiana rigescens // Molecules. 2020. V. 25. P. 1219. https://doi.org/10.3390/molecules25051219

Дополнительные материалы отсутствуют.