Физиология растений, 2022, T. 69, № 5, стр. 543-550

Влияние недостатка цинка в субстрате на рост, фотосинтетический аппарат и семенную продуктивность ячменя

Н. М. Казнина a*, Ю. В. Батова a, Е. С. Холопцева a, А. Ф. Титов a

a Институт биологии Карельского научного центра Российской академии наук, Федеральный исследовательский центр “Карельский научный центр РАН”
Петрозаводск, Россия

* E-mail: kaznina@krc.karelia.ru

Поступила в редакцию 16.01.2022
После доработки 25.01.2022
Принята к публикации 02.02.2022

Полный текст (PDF)

Аннотация

В условиях вегетационного опыта изучали влияние недостатка цинка в субстрате на ряд показателей роста, состояния фотосинтетического аппарата (ФСА), а также параметры семенной продуктивности ячменя (Hordeum vulgare L., сорт Нур) в зависимости от фазы развития растений. Выявлены различия в ответной реакции ячменя на дефицит цинка на разных фазах развития растений. В частности, в фазу колошения недостаток этого микроэлемента в субстрате вызывал торможение роста, но не сказывался негативно на фотосинтетической функции растений. В фазу выхода в трубку отрицательное влияние недостатка цинка в отношении параметров роста сглаживалось, однако наблюдалось ингибирование работы ФСА. Ухудшение снабжения соцветия ассимилятами в этот период, видимо, явилось одним из важных факторов снижения урожая семян, наблюдаемое у опытных растений. В фазу колошения растения, выросшие в условиях дефицита цинка, отставали от растений контрольного варианта по высоте побега и площади листовых пластинок подфлагового и флагового листьев, при этом скорость фотосинтеза у них не отличалась от контрольных значений или даже превышала их. Поддержание высокой скорости фотосинтеза в листьях, являющихся основными донорами ассимилятов для созревающих семян, обеспечило формирование полноценных зерновок на главном побеге, хотя и в меньшем количестве, чем в благоприятных условиях минерального питания.

Ключевые слова: Hordeum vulgare, цинк, рост, развитие, фотосинтез, формирование семян

ВВЕДЕНИЕ

К числу факторов внешней среды, оказывающих сильное отрицательное влияние на рост и продуктивность растений и урожай сельскохозяйственных культур, относится дефицит элементов минерального питания, в частности микроэлементов. Это связано с их необходимостью для нормального протекания многих процессов жизнедеятельности растений, в том числе и для формирования у них органов плодоношения. Одним из наиболее важных микроэлементов, непосредственно влияющих на величину урожая семян, является цинк. Установлено, что он необходим для работы более 300 ферментов [1] и участвует в функционировании и защите клеточных мембран [2, 3]. Кроме того, цинк является структурным элементом транскрипционных факторов с доменом “цинковые пальцы” (zinc finger), которые играют ключевую роль в регуляции экспрессии целого ряда генов, участвующих в процессе генеративного развития растений [4]. Помимо этого, хорошо известно и опосредованное влияние дефицита этого микроэлемента на формирование урожая семян за счет торможения роста растений, замедления скорости фотосинтеза, нарушения водного обмена [5].

Как известно, элементы семенной продуктивности растений закладываются последовательно на разных этапах их жизненного цикла [6, 7]. Например, у злаков количество генеративных побегов определяется в фазу кущения, число колосков в колосе и цветков в колосках – в фазу выхода в трубку. Число зерен в колосе зависит от процессов, происходящих в фазы колошения и цветения, а размеры зерновок и их масса – в фазы налива и созревания семян. Все эти процессы контролируются большим числом различных генов [8, 9]. Кроме того, существенное влияние на процесс формирования семян оказывают также и условия окружающей среды, которые действуют как сигнал к корректировке развития с учетом пластических и энергетических возможностей организма [10, 11].

К настоящему времени накоплен довольно большой фактический материал, однозначно свидетельствующий об отрицательном влиянии недостатка цинка в почве на урожай зерна культурных злаков, а также на отдельные компоненты семенной продуктивности [4, 12]. Однако основные причины снижения урожая в этих условиях до сих пор четко не определены. Не выявлены и так называемые “критические периоды” в развитии злаков, когда они наиболее чувствительны к недостатку этого микроэлемента, хотя и обнаружено, что ответная реакция растений на дефицит цинка, а также их устойчивость к действию данного стресс-фактора на разных фазах развития неодинакова [13].

Исходя из вышеизложенного целью данного исследования явилось изучение влияния дефицита цинка на ряд показателей роста и состояния фотосинтетического аппарата (ФСА) ячменя на разных фазах развития растений, а также на их семенную продуктивность.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

В качестве объекта исследования использовали яровой ячмень (Hordeum vulgare L.) сорта Нур. Растения выращивали в условиях вегетационного опыта в вегетационном домике в сосудах с песком (высота 40 см, диаметр 20 см) объемом 5 л до фазы восковой спелости семян. Плотность посева составляла 15 растений на сосуд. В опыте использовали промытый водой и прокаленный крупный белый речной песок. Полив осуществляли два раза в неделю питательным раствором Хогланда-Арнона с оптимальной (2.0 мкМ) концентрацией Zn2+ (контроль) или без добавления Zn2+ (опыт). Анализ растений проводили через 26, 34, 50 и 88 суток после посева, когда у растений фиксировали фазу кущения (IV этап органогенеза, переход к формированию соцветия), фазу выхода в трубку (V−VI этапы органогенеза, начало формирования органов цветка), колошения (VIII этап органогенеза, завершение формирования органов цветка) и созревания семян (XII этап органогенеза), соответственно [6].

В фазы кущения и выхода в трубку о влиянии дефицита цинка на рост растений судили по изменениям (относительно контроля) длины наиболее развитого корня, биомассы подземных и надземных органов, суммарной длины междоузлий стебля. Помимо этого, измеряли высоту конуса нарастания побега и определяли этап органогенеза [6]. Для оценки состояния ФСА растений использовали наиболее молодой, полностью закончивший рост лист (2-й от основания главного побега в фазу кущения и 4-й – в фазу выхода в трубку). О состоянии ФСА судили по таким показателям, как площадь листовой пластинки, содержание фотосинтетических пигментов, количество устьиц на единицу площади листа, диаметр устьичной щели, устьичная проводимость и скорость фотосинтеза.

В фазу колошения о работе ФСА судили по скорости фотосинтеза в 4-ом от основания главного побега, 5-ом (подфлаговом) и 6-ом (флаговом) листьях.

Влияние дефицита цинка на семенную продуктивность определяли в фазу восковой спелости семян, используя следующие показатели: общее число побегов на растении и количество генеративных побегов, длину и биомассу колоса главного и боковых побегов, количество в них колосков и зерновок, массу 1000 зерновок, урожай зерна с одного растения [14].

Высоту конуса нарастания и этап органогенеза определяли с помощью бинокулярной лупы МБС-10 (ЛЗОС, Россия). Площадь листа рассчитывали по формуле: S = 2/3ld, где l – длина листа, d – ширина листа [15]. Содержание пигментов (хлорофиллы a, b и каротиноиды) измеряли спектрофотометрически, экстрагируя 80% ацетоном [16]. Подсчет числа устьиц на нижнем эпидермисе листа и измерение диаметра устьичной щели осуществляли методом отпечатков с использованием светового микроскопа Микмед-2 (ЛОМО, Россия) и окуляр-микрометра [17]. Интенсивность фотосинтеза и устьичную проводимость изучали с помощью установки для исследования СО2-газообмена и концентрации водяных паров HCM-1000 (Walz, Германия).

Биологическая повторность для морфометрических показателей в каждом варианте опыта составляла не менее 20 растений. При измерении физиологических показателей биологическая повторность была 5-кратной, аналитическая повторность – 3-кратной. Статистическую обработку полученных данных проводили с использованием программы Microsoft Excel 2007. Достоверность различий между вариантами опыта оценивали с помощью t-критерия Стьюдента при P < 0.05.

РЕЗУЛЬТАТЫ

Проведенные опыты показали, что в фазу кущения у опытных растений ячменя длина наиболее развитого корня, сухая биомасса корней, а также сухая биомасса побега оказались заметно меньше, чем в контроле (табл. 1). Помимо этого, суммарная длина междоузлий стебля главного побега у них была на 33% ниже, чем у растений контрольного варианта. На росте конуса нарастания побега на этой фазе развития недостаток цинка не сказывался – его высота была практически равной у растений контрольного и опытного вариантов, однако в условиях неблагоприятного минерального питания несколько задерживалась его дифференцировка. Так, если в контроле 86% растений находились на этапе образования лопастей соцветия (IV этап органогенеза), а у 14% на конусе нарастания уже фиксировали начало закладки цветковых бугорков, что соответствует началу V этапа органогенеза, то в опытном варианте у всех растений отмечался IV этап органогенеза.

Таблица 1.

Влияние недостатка цинка в субстрате на показатели роста растений ячменя в фазы кущения и выхода в трубку

Показатель Фаза кущения Фаза выхода в трубку
контроль опыт контроль опыт
Высота побега, см 29.9 ± 0.7 30.3 ± 0.8 38.7 ± 1.1 36.6 ± 1.3
Длина наиболее развитого корня, см 27.1 ± 2.0 16.6 ± 1.0* 20.4 ± 1.7 23.2 ± 1.9
Сухая биомасса побега, мг/растение 76.1 ± 3.0 65.2 ± 2.0* 184.2 ± 12.1 212.2 ± 10.1
Сухая биомасса корней, мг/растение 42.2 ± 1.1 32.1 ± 1.1* 61.3 ± 5.0 63.1 ± 4.2
Суммарная длина междоузлий, см 4.9 ± 0.3 3.3 ± 0.3* 17.2 ± 0.9 13.9 ± 1.1*

Примечание. Звездочками (*) обозначены достоверные различия от контроля (Р < 0.05).

Анализ ФСА показал, что в фазу кущения при недостатке цинка в субстрате площадь 2-го листа заметно уменьшается (на 20% по сравнению с контролем), но его фотосинтетическая активность при этом меняется незначительно (табл. 2). Небольшое уменьшение у растений опытного варианта количества устьиц и диаметра устьичной щели, а также отношения хлорофиллов (a/b) не повлияло на устьичную проводимость и скорость фотосинтеза, что свидетельствует о сохранении в листе необходимого уровня газообмена.

Таблица 2.

Влияние недостатка цинка в субстрате на фотосинтетический аппарат растений ячменя в фазы кущения и выхода в трубку

Показатель Фаза кущения Фаза выхода в трубку
контроль опыт контроль опыт
Площадь листа, см2 6.90 ± 0.26 5.51 ± 0.28* 8.13 ± 0.59 8.35 ± 0.30
Содержание хлорофилла а, мг/г сырого веса 1.261 ± 0.065 1.288 ± 0.020 1.253 ± 0.015 1.047 ± 0.016*
Содержание хлорофилла b, мг/г сырого веса 0.511 ± 0.032 0.545 ± 0.006 0.524 ± 0.004 0.424 ± 0.006*
Сумма хлорофиллов (а + b), мг/г сырого веса 1.772 ± 0. 96 1.834 ± 0.026 1.777 ± 0.018 1.471 ± 0.022*
Отношение хлорофиллов (a/b) 2.48 ± 0.03 2.36 ± 0.02* 2.39 ± 0.02 2.47 ± 0.01*
Содержание каротиноидов, мг/г сырого веса 0.338 ± 0.017 0.360 ± 0.005 0.305 ± 0.006 0.262 ± 0.011*
Интенсивность фотосинтеза мкмоль/(м2 с) 7.18 ± 0.21 7.17 ± 0.15 10.66 ± 0.88 7.99 ± 0.14*
Количество устьиц, шт./мм2 225.6 ± 3.9 205.3 ± 3.2* 224.3 ± 4.2 211.9 ± 5.1
Диаметр устьичной щели, мкм 14.13 ± 0.28 13.23 ± 0.23* 15.6 ± 0.2 13.7 ± 0.2*
Устьичная проводимость, ммоль/(м2 с) 103.0 ± 6.4 117.8 ± 7.0 206.9 ± 10.8 111.3 ± 5.0*

Примечание. Показатели представлены для самого молодого, полностью закончившего рост листа (2-го и 4-го от основания главного побега для фазы кущения и выхода в трубку, соответственно). Звездочками (*) обозначены достоверные различия от контроля (Р < 0.05).

В фазу выхода в трубку отрицательное влияние недостатка цинка в субстрате на растения в отношении параметров роста несколько сглаживалось. В частности, у опытных растений не было обнаружено уменьшения (по сравнению с контролем) большинства изученных морфометрических показателей, за исключением суммарной длины междоузлий, которая была на 20% ниже, чем в контроле. Значимых различий в размере и дифференциации конуса нарастания побега между опытными и контрольными растениями также не наблюдалось.

В отличие от показателей роста, параметры, характеризующие состояние ФСА, оказались весьма чувствительными к дефициту цинка на этой фазе развития растений. Так, несмотря на сохранение площади 4-го листа на уровне контроля, у растений опытного варианта снижалось содержание зеленых и желтых пигментов (на 17 и 14%, соответственно), а также отношение содержания хлорофиллов (а/б) (табл. 2). Кроме того, у них отмечено уменьшение (на 12% по отношению к контролю) диаметра устьичной щели и значительное снижение (на 50%) устьичной проводимости. Одновременно с этим замедлялась (на 25%) и скорость ассимиляции углекислого газа.

К фазе колошения растения, выросшие в условиях недостатка цинка, отставали от растений контрольного варианта по высоте побега на 15%. Кроме того, у них оказалась меньше, чем в контроле площадь листовых пластинок 5-го (подфлагового) и 6-го (флагового) листьев (на 27 и 54%, соответственно). При этом скорость фотосинтеза подфлагового листа практически не отличалась от растений контрольного варианта, а флагового – даже превышала контрольные значения (рис. 1).

Рис. 1.

Влияние недостатка цинка в субстрате на интенсивность фотосинтеза в листьях растений ячменя в фазу колошения. 1 – контроль; 2 – опыт. Звездочкой (*) обозначены достоверные различия от контроля (Р < 0.05).

Отставание опытных растений от контрольных по высоте главного побега и накоплению сухой биомассы надземных органов сохранялось и в фазу созревания семян (табл. 3). При этом отрицательное влияние недостатка цинка на количество генеративных побегов, а также на длину колоса главного побега и количество колосков не наблюдалось (табл. 4). Тем не менее количество зерновок в колосе у опытных растений оказалось заметно меньше, чем у контрольных: на главном побеге – на 11%, на боковых побегах – на 56%. Необходимо также отметить, что масса 1000 зерновок на главном побеге была практически равной у опытных и контрольных растений, тогда как на боковых побегах в опытном варианте наблюдалось значительное уменьшение этого показателя (на 41% по отношению к контролю). В результате общий урожай зерна с растения при недостатке цинка оказался на 23% ниже, чем при его оптимальном содержании в субстрате.

Таблица 3.

Влияние недостатка цинка в субстрате на показатели роста растений ячменя в фазу созревания семян

Показатель Контроль Опыт
Высота растения, см 56.00 ± 0.67 48.17 ± 0.94*
Сухая биомасса надземных органов, г/растение 2.37 ± 0.12 2.04 ± 0.08*
Общее количество побегов, шт./растение 2.46 ± 0.19 3.13 ± 0.22
Количество генеративных побегов, шт./растение 1.79 ± 0.12 2.30 ± 0.13
Сухая биомасса подземных органов, г/растение 0.17 ± 0.03 0.13 ± 0.02
Площадь подфлагового листа главного побега, см2 12.24 ± 1.09 8.99 ± 0.68*
Площадь флагового листа главного побега, см2 3.85 ± 0.52 1.77 ± 0.25*

Примечание. Звездочками (*) обозначены достоверные различия от контроля (Р < 0.05).

Таблица 4.

Влияние недостатка цинка в субстрате на семенную продуктивность растений ячменя

Показатель Главный побег Боковые побеги
контроль опыт контроль опыт
Урожай зерна, г/побег 1.40 ± 0.05 1.16 ± 0.08* 0.44 ± 0.04 0.25 ± 0.05*
Количество колосков, шт./колос 13.43 ± 0.21 12.61 ± 0.49 8.80 ± 0.61 8.23 ± 0.38
Количество зерновок, шт./колос 13.16 ± 0.23 11.75 ± 0.66* 3.39 ± 0.55 1.48 ± 0.35*
Масса 1000 зерен, г 51.79 ± 1.83 49.78 ± 1.35 27.00 ± 3.21 15.81 ± 0.76*

Примечание. Звездочками (*) обозначены достоверные различия от контроля (Р < 0.05).

ОБСУЖДЕНИЕ

Хорошо известно, что продуктивность растений во многом определяется их способностью поддерживать в неблагоприятных условиях внешней среды темпы роста и нормальную работу ФСА. Недостаток цинка, как известно, негативно влияет на рост и ФСА растений [4, 12]. При этом обнаружено, что их ответная реакция на воздействие этого стресс-фактора во многом зависит от фазы развития. Так, у фасоли признаки дефицита цинка выявлялись к фазе 1-го настоящего листа [18]. У растений ячменя негативное влияние недостатка этого микроэлемента на рост проявлялось сильнее в фазу созревания семян, по сравнению с фазой начала колошения [13]. Полученные нами данные также подтверждают это. В частности, в фазу кущения влияние недостатка цинка в субстрате на изученные показатели роста оказалось более выраженными, чем в фазу выхода в трубку. Отметим, что в большей степени в этих условиях уменьшалась длина междоузлий. Ингибирование роста междоузлий стебля, а также уменьшение размеров листьев наблюдалось при дефиците цинка и у других видов растений [19]. Предполагается, что это может быть обусловлено снижением содержания ауксина – гормона, который контролирует процессы деления и растяжения клеток [3, 12]. Кроме того, являясь структурным элементом белков, участвующих в регуляции экспрессии генов, связанных с метаболизмом ДНК, цинк напрямую влияет на деление клеток, а его недостаток приводит к торможению этого процесса. Дефицит этого микроэлемента может отрицательно влиять и на растяжение клеток, вызывая нарушение проницаемости клеточных мембран [20, 21].

О влиянии дефицита цинка на дифференциацию апикальной меристемы стебля данных в известной нам литературе нет. В наших опытах при недостатке цинка у растений ячменя несколько задерживалось наступление очередного этапа органогенеза в фазу кущения. Однако уже к фазе выхода в трубку различия в темпах развития между опытными и контрольными растениями нивелировались.

В целом ряде работ указывается на значительное замедление скорости фотосинтеза у растений, испытывающих дефицит цинка [2224]. По мнению одних авторов, это связано с нарушениями в протекании световых реакций [22, 24], по мнению других – с работой устьичного аппарата [19, 25]. В литературе также имеются единичные сведения, указывающие на то, что ответная реакция ФСА на дефицит цинка может изменяться в ходе онтогенеза [26]. В наших опытах при анализе функционирования ФСА на разных фазах развития ячменя, мы учитывали то обстоятельство, что листья, в зависимости от их местоположения на побеге, играют разную роль в обеспечении органов растения пластическими веществами. В частности, у злаков ассимиляты из нижних листьев (1-го и 2-го) передвигаются преимущественно в корни и молодые листья. Из 3-го и 4-го листьев усиливается отток ассимилятов к конусу нарастания побега, где начинается формирование соцветия, 5-й лист снабжает ассимилятами развивающийся колос, а 6-й лист – формирующиеся зерновки [6]. Полученные нами результаты показали, что в фазу кущения недостаток цинка практически не оказывает отрицательного воздействия на фотосинтетическую активность 2-го листа у ячменя. Обнаруженное снижение у опытных растений отношения хлорофиллов (a/б), свидетельствующее об увеличении доли мембран гран в хлоропластах [24], вероятно, связано с адаптацией к неблагоприятным условиям минерального питания и в определенной степени направлено на сохранение скорости фотосинтеза на необходимом уровне.

В отличие от этого, в фазу выхода в трубку было зафиксировано довольно сильное негативное воздействие недостатка цинка на фотосинтетическую функцию 4-го листа, на что указывает заметное уменьшение содержания фотосинтетических пигментов, снижение устьичной проводимости и замедление скорости фотосинтеза. Уменьшение количества хлорофиллов и каротиноидов при дефиците микроэлемента считается одним из типичных признаков этого типа стрессового воздействия. Ранее подобный эффект уже был отмечен у растений кукурузы [22, 23], риса [24], капусты [19] и нута [26]. Полагают, что это обусловлено главным образом усилением деградации пигментов под влиянием избытка АФК, образующихся в этом случае [3]. С увеличением образования радикалов кислорода и повреждением мембран хлоропластов также часто связывают и снижение интенсивности фотосинтеза растений при недостатке цинка в субстрате [19, 24]. Однако ранее нами было установлено, что у ячменя в этих условиях усиления интенсивности ПОЛ в листьях не происходит, что говорит об отсутствии окислительного стресса [27]. Более вероятной причиной снижения скорости ассимиляции углерода у ячменя является замедление скорости протекания реакций темновой фазы фотосинтеза вследствие нарушения работы устьичного аппарата и/или уменьшения активности участвующих в них ферментов. Снижение устьичной проводимости у растений при недостатке цинка уже отмечалось ранее [22, 24, 25]. При этом обнаружено, что в таких условиях уменьшается количество устьиц [25, 28] и нарушается работа замыкающих клеток из-за снижения содержания в них K+ [19, 20]. Помимо этого, не исключается, что дефицит цинка может оказывать прямое негативное воздействие на активность РБФК/О [23], а также карбоангидразы – важнейшего Zn-содержащего фермента растительных клеток, который способствует обеспечению РБФК/О молекулами СО2 [23, 26]. В наших опытах у растений, испытывающих дефицит цинка, несколько снижался (по отношению к контролю) только диаметр устьичной щели. Устьичная же проводимость при этом оказалась в 2 раза ниже, чем в контроле, что может быть связано с низкой активностью карбоангидразы, как это было обнаружено у пшеницы при дефиците этого микроэлемента [12].

В фазу колошения у растений опытного варианта скорость фотосинтеза в 4-ом листе оставалась низкой, тогда как в подфлаговом листе она не уступала контрольным значениям, а во флаговом – даже превышала их. Известно, что поддержание в неблагоприятных условиях минерального питания высокой скорости фотосинтеза в листьях, обеспечивающих колос ассимилятами, чрезвычайно важно для формирования семян, особенно при уменьшении площади листьев. Поэтому обнаруженный нами эффект, очевидно, является защитно-приспособительным механизмом, направленным на сохранение семенной продуктивности у растений, испытывающих дефицит цинка.

В целом ряде исследований показано, что недостаток цинка в субстрате негативно отражается на урожае семян у большинства зерновых злаков [29]. Среди основных причин этого называют снижение количества генеративных побегов, уменьшение размера соцветия [30], количества колосков [31, 32], снижение завязываемости семян [29, 32] и задержку их созревания [33]. В наших опытах у ячменя в условиях дефицита цинка не было зафиксировано уменьшения количества продуктивных побегов, размера соцветия и количества колосков в колосе. Существенное же снижение урожая зерна было связано главным образом с уменьшением количества зерновок. Известно, что у ячменя количество зерновок определяется прежде всего числом фертильных цветков, сформированных к началу фазы цветения, что, в свою очередь, зависит от условий окружающей среды, которые складываются на протяжении фазы выхода в трубку и стеблевания [7, 11]. Установлено, что недостаток цинка в этот период ведет к нарушению процессов микроспоро- и гаметогенеза [34, 35], что может быть обусловлено снижением активности целого ряда факторов транскрипции, содержащих домен “цинковые пальцы”, которые участвуют в процессах развития пыльников и пыльцевых зерен [36, 37]. Это подтверждают данные о том, что на этом этапе развития у растений наблюдается активизация большого количества генов, связанных с транспортом минеральных элементов, в том числе микроэлементов [7]. Причиной слабого завязывания семян в условиях недостатка цинка может быть также пониженный уровень ауксина [12] и/или повышенный уровень АБК, приводящие к преждевременной гибели цветков [38]. Среди причин снижения урожая семян в неблагоприятных условиях минерального питания важную роль может играть и низкая активность ФСА [11, 39, 40]. Это согласуется с полученными нами результатами. Дефицит цинка не оказывал сильного негативного влияния на активность ФСА в фазу кущения, когда на конусе нарастания побега происходит закладка основных элементов соцветия, но вызывал значительное уменьшение фотосинтетической активности в фазу выхода в трубку, когда начинается формирование цветков. Не исключено, что ухудшение снабжения соцветия ассимилятами в этот период может быть одним из факторов, ведущих к увеличению количества стерильных цветков и, как следствие, к уменьшению количества зерновок в колосе и урожая семян. Отсутствие же снижения в стрессовых условиях биомассы зерновок, сформировавшихся на главном побеге, вероятно, связано с поддержанием высокой скорости фотосинтеза в подфлаговом и флаговом листьях.

Таким образом, полученные нами данные показывают, что отрицательное влияние недостатка цинка в субстрате на рост и ФСА растений ячменя различно на разных фазах онтогенеза. В фазу кущения определенные структурно-функциональные перестройки ФСА, по-видимому, способствуют поддержанию высокой фотосинтетической активности растений, испытывающих дефицит цинка, что во многом обеспечивает успешный переход к генеративному развитию и формирование элементов соцветия. В фазу выхода в трубку, когда заметно возрастает потребность растений в микроэлементах, дефицит цинка негативно сказывается на работе ФСА, что выражается в замедлении скорости фотосинтетических процессов и, по нашему мнению, может быть одной из причин уменьшения в этих условиях количества фертильных цветков и снижения количества зерновок и, в целом, урожая семян. Поддержание же высокой скорости фотосинтеза в листьях, являющихся основными донорами ассимилятов в созревающие семена, обеспечило формирование на главном побеге полноценных зерновок с биомассой, соответствующей биомассе зерновок с растений, находящихся в благоприятных условиях минерального питания.

Исследования проводили с использованием оборудования Центра коллективного пользования Федерального исследовательского центра “Карельский научный центр РАН”.

Финансовое обеспечение исследований осуществлялось из средств федерального бюджета на выполнение государственного задания КарНЦ РАН (тема № FMEN-2022-0004).

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов. Настоящая статья не содержит каких-либо данных, полученных с участием людей и животных в качестве объектов исследования.

Список литературы

  1. Coleman J.E. Zinc enzymes // Curr. Opin. Chem. Biol. 1998. V. 2. P. 222. https://doi.org/10.1016/s1367-5931(98)80064-1

  2. Marschner H. Mineral nutrition of higher plants. London: Academic press, 1995. 889 p. https://doi.org/10.1016/C2009-0-63043-9

  3. Cakmak I. Possible roles of zinc in protecting plant cells from damage by reactive oxygen species // New Phytol. 2000. V. 146. P. 185. https://doi.org/10.1046/j.1469-8137.2000.00630.x

  4. Alloway B.J. Micronutrients and crop production: an introduction // Micronutrient Deficiencies in Global Crop Production / Ed. B.J. Alloway. Springer Science + Business Media B.V. 2008. P. 1. https://doi.org/10.1007/978-1-4020-6860-7

  5. Казнина Н.М., Титов А.Ф. Влияние дефицита цинка на физиологические процессы и продуктивность культурных злаков // Успехи современной биологии. 2019. Т. 139. № 3. С. 280. https://doi.org/10.1134/S0042132419030037

  6. Куперман Ф.М. Морфофизиология растений. Москва: Высшая школа, 1984. 240 с.

  7. Digel B., Pankin A., von Korff M. Global transcriptome profiling of developing leaf and shoot apices reveals distinct genetic and environmental control of floral transition and inflorescence development in barley // Plant Cell. 2015. V. 27. P. 2318. https://doi.org/10.1105/tpc.15.00203

  8. Лутова Л.А., Ежова Т.А., Додуева И.Е., Осипова М.А. Генетика развития растений. Санкт-Петербург: Изд-во Н-Л., 2010. 432 с.

  9. Huijser P., Schmid M. The control of developmental phase transitions in plants // Development. 2011. V. 138. P. 4117. https://doi.org/10.1242/dev.063511

  10. Posé D., Yant L., Schmid M. The end of innocence: flowering networks explode in complexity // Curr. Opin. Plant Biol. 2012. V. 15. P. 45. https://doi.org/10.1016/j.pbi.2011.09.002

  11. Gol L., Tomé F., von Korff M. Floral transitions in wheat and barley: interactions between photoperiod, abiotic stresses, and nutrient status // J. Exp. Bot. 2017. V. 68. № 7. P. 1399. https://doi.org/10.1093/jxb/erx055

  12. Rehman A., Farooq M., Ozturk L., Asif M., Siddique K.H.M. Zinc nutrition in wheat-based cropping systems // Plant Soil. 2018. V. 422. P. 283. https://doi.org/10.1007/s11104-017-3507-3

  13. Genc Y., McDonald G.K., Graham R.D. Differential expression of zinc efficiency during the growing season of barley // Plant Soil. 2004. V. 263. P. 273. https://doi.org/10.1023/B:PLSO.0000047741.52700.29

  14. Левина Р.Е. Репродуктивная биология семенных растений. Москва: Наука, 1981. 96 с.

  15. Аникиев В.В., Кутузов Ф.Ф. Новый способ определения площади листовой поверхности у злаков // Физиология растений. 1961. Т. 8. С. 375.

  16. Шлык А.А. Определение хлорофиллов и каротиноидов в экстрактах зеленых листьев // Биологические методы в физиологии растений. Москва: Наука, 1971. С. 154.

  17. Жолкевич В.Н., Пильщикова Н.В. Методы изучения транспирации и состояния устьиц // Водный обмен растений / Под ред. И.А. Тарчевского, В.Н. Жолкевича. Москва: Наука, 1989. С. 152.

  18. Hacisalihoglu G., Kochian L.V. How do some plants tolerate low levels of soil zinc? Mechanisms of zinc efficiency in crop plants // New Phytol. 2003. V. 159. P. 341. https://doi.org/10.1046/j.1469-8137.2003.00826.x

  19. Hajiboland R., Amirazad F. Growth, photosynthesis and antioxidant defense system in Zn-deficient red cabbage plants // Plant Soil Environ. 2010. V. 56. № 5. P. 209. https://doi.org/10.17221/207/2009-PSE

  20. Sharma P.N., Tripathi A., Bisht S.S. Zinc requirement for stomatal opening in cauliflower // Plant Physiol. 1995. V. 107. P. 751. https://doi.org/10.1104/pp.107.3.751

  21. Ghanepour S., Shakiba M.-R., Toorchi M., Oustan S. Role of Zn nutrition in membrane stability, leaf hydration status, and growth of common bean grown under soil moisture stress // J. Biodivers. Environ. Sci. 2015. V. 6. № 4. P. 9.

  22. Wang H., Jin J.Y. Photosynthetic rate, chlorophyll fluorescence parameters, and lipid peroxidation of maize leaves as affected by zinc deficiency // Photosynthetica. 2005. V. 43. № 4. P. 591. https://doi.org/10.1007/s11099-005-0092-0

  23. Salama Z.A., El-Fouly M.M., Lazova G., Popova L.P. Carboxylating enzymes and carbonic anhydrase functions were suppressed by zinc deficiency in maize and chick pea plants // Acta Physiol. Plant. 2006. V. 28. № 5. P. 445. https://doi.org/10.1007/BF02706627

  24. Chen W., Yang X., He Z., Feng Y., Hu F. Differential changes in photosynthetic capacity, 77 K chlorophyll fluorescence and chloroplast ultrastructure between Zn-efficient and Zn-inefficient rice genotypes (Oryza sativa) under low zinc stress // Physiol. Plant. 2008. V. 132. P. 89. https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.2007.00992.x

  25. Mattiello E.M., Ruiza H.A., Nevesa J.C.L., Ventrellab M.C., Araújo W.L. Zinc deficiency affects physiological and anatomical characteristics in maize leaves // J. Plant Physiol. 2015. V. 183. P. 138. https://doi.org/10.1016/j.jplph.2015.05.014

  26. Siddiqui S.N., Umar S., Iqbal M. Zinc-induced modulation of some biochemical parameters in a high- and a low-zinc-accumulating genotype of Cicer arietinum L. grown under Zn-deficient condition // Protoplasma. 2015. V. 252. P. 1335. https://doi.org/10.1007/s00709-015-0767-8

  27. Kaznina N.M., Batova Y.V., Repkina N.S. Effect of zinc deficiency and excess on the antioxidant enzymes activity in barley seedling leaves // J. Sib. Fed. Univ. Biol. 2021. V. 14(3). P. 287. https://doi.org/10.17516/1997-1389-0351

  28. Subba P., Mukhopadhyay M., Mohato S.K., Bhutia K.D., Mondal T.K., Ghosh S.K. Zinc stress induces physiological, ultra-structural and biochemical changes in mandarin orange (Citrus reticulata Blanco) seedlings // Physiol. Mol. Biol. Plants. 2014. V. 20. № 4. P. 461. https://doi.org/10.1007/s12298-014-0254-2

  29. Cakmak I., Ekiz H., Yilmaz A., Torun B., Köleli N., Gültekin I., Alkan A., Eker S. Differential response of rye, triticale, bread and durum wheat to zinc deficiency in calcareous soils // Plant Soil. 1997. V. 188. P. 1. https://doi.org/10.1023/A:1004247911381

  30. Abdoli M., Esfandiari E. Assessment of genetic variation and zinc deficient tolerance in spring durum wheat (Triticum durum Desf.) genotypes in calcareous soil with zinc deficiency // J. Genet. Res. 2017. V. 3. № 1. P. 7. https://doi.org/10.22080/JGR.2017.13099.1070

  31. Khan M., Fuller M., Baloch F. Effect of soil applied zinc sulphate on wheat (Triticum aestivum L.) grown on a calcareous soil in Pakistan // Cereal Res. Commun. 2008. V. 36. P. 571. https://doi.org/10.1556/CRC.36.2008.4.6

  32. Ma D., Sun D., Wang C., Ding H., Qin H., Hou J., Huang X., Xie Y., Guo T. Physiological responses and yield of wheat plants in zinc-mediated alleviation of drought stress // Front. Plant Sci. 2017. V. 8. P. 860. https://doi.org/10.3389/fpls.2017.00860

  33. Pandey N., Pathak G.C., Sharma C.P. Impairment in reproductive development is a major factor limiting yield of black gram under zinc deficiency // Biol. Plant. 2009. V. 53. № 4. P. 723. https://doi.org/10.1007/s10535-009-0131-y

  34. Mousavi S.R. Zinc in crop production and interaction with phosphorus // Aust. J. Basic Appl. Sci. 2011. V. 5. P. 1503.

  35. Nautiyal N., Yadav S., Singh D. Improvement in reproductive development, seed yield, and quality in wheat by zinc application to a soil deficient in zinc // Commun. Soil Sci. Plant Anal. 2011. V. 42. P. 2039. https://doi.org/10.1080/00103624.2011.596235

  36. Takatsuji H., Mori M., Benfey P.N., Ren L., Chua N.H. Characterization of zinc finger DNA-binding protein expressed specifically in petunia petals and seedlings // EMBO J. 1992. V. 11. P. 241. https://doi.org/10.1002/j.1460-2075.1992.tb05047.x

  37. Agarwal P., Arora R., Ray S., Singh A.K., Singh V.P., Takatsuji H., Kapoor S., Tyagi A.K. Genome-wide identification of C2H2 zinc-finger gene family in rice and their phylogeny and expression analysis // Plant Mol. Biol. 2007. V. 65. P. 467. https://doi.org/10.1007/s11103-007-9199-y

  38. Brown P.H., Cakmak I., Zhang Q. Form and function of zinc plants // Zinc in soils and plants / Ed. A.D. Robson. Netherlands: Springer, 1993. P. 93. https://doi.org/10.1007/978-94-011-0878-2_7

  39. Genc Y., McDonald G.K., Graham R.D. A soil-based method to screen for zinc efficiency in seedlings and its ability to predict yield responses to zinc deficiency in mature plants // Aust. J. Agric. Res. 2002. V. 53. № 4. P. 409. https://doi.org/10.1071/AR01088

  40. Genc Y., McDonald G.K., Graham R.D. Contribution of different mechanisms to zinc efficiency in bread wheat during early vegetative stage // Plant Soil. 2006. V. 281. P. 353. https://doi.org/10.1007/s11104-005-4725-7

Дополнительные материалы отсутствуют.