Агрохимия, 2022, № 10, стр. 47-54

Фунгицидная активность химических и биологических препаратов в отношении возбудителей альтернариоза картофеля

А. С. Орина 1*, А. В. Хютти 1, А. М. Шпанев 1

1 Всероссийский научно-исследовательский институт защиты растений
196608 Санкт-Петербург–Пушкин, шоссе Подбельского, 3, Россия

* E-mail: orina-alex@yandex.ru

Поступила в редакцию 25.04.2022
После доработки 03.06.2022
Принята к публикации 12.07.2022

Полный текст (PDF)

Аннотация

Альтернариоз – одно из самых распространенных заболеваний картофеля во всем мире, в том числе и в России, которое может вызывать снижение урожая клубней на 10–50%. На территории РФ область высокой вредоносности альтернариоза совпадает с ареалом наиболее патогенного вида Alternaria solani, тогда как другой возбудитель A. tenuissima встречается во всей зоне возделывания картофеля. Наиболее действенной мерой борьбы с данным заболеванием является химический метод защиты. Однако современные подходы к защите растений также предполагают применение биологических средств. При лабораторной оценке действия 10 химических и 9 биологических препаратов в отношении возбудителей альтернариоза картофеля установлено, что все проанализированные препараты подавляли рост грибов Alternaria: ингибирующее действие химических и биологических фунгицидов варьировало в диапазоне 33–80% и 20–66% соответственно. Показано, что препараты Дискор и Ревус Топ, содержащие дифеноконазол и мандипропамид, а также препарат Луна Транквилити на основе пириметанила и флуопирама наиболее эффективно подавляли рост этих грибов (ингибирующее действие 68–80%). Среди биологических препаратов наиболее эффективно рост грибов Alternaria подавляли БФТИМ КС-2 и Витаплан на основе Bacillus amyloliquefaciens и B. subtilis, их ингибирующее действие составило 60–66%. Полученные результаты предваряют проведение полевых испытаний препаратов в регионах возделывания культуры с разными природно-климатическими условиями, для создания адекватной стратегии защиты картофеля от альтернариоза.

Ключевые слова: альтернариоз, картофель, Alternaria solani, Alternaria tenuissima, фунгицидное действие, химические средства защиты растений, биологические препараты.

ВВЕДЕНИЕ

Альтернариоз является одним из самых распространенных заболеваний картофеля во всем мире. Вредоносность болезни проявляется прежде всего в снижении урожая из-за уменьшения фотосинтетической поверхности листьев, а также в возможности загрязнении сельскохозяйственной продукции метаболитами грибов-возбудителей, среди которых могут присутствовать фитотоксины, микотоксины, аллергены и ферменты [1]. Поражение посадок картофеля альтернариозом снижает урожай клубней на 10–50% [26].

На территории России зона высокой вредоносности альтернариоза совпадает с ареалом наиболее патогенного вида Alternaria solani Sorauer и находится в центре и на юге европейской части России, а также на юге Западной Сибири, в Прибайкалье и в Приморье на Дальнем Востоке [710]. Повышенные температуры воздуха в сочетании с кратковременным выпадением осадков и обильными утренними росами благоприятны для развития A. solani. Тогда как вид A. tenuissima (Kunze) Wiltshire и другие мелкоспоровые виды Alternaria в меньшей степени зависят от климатических условий и распространены на всей территории возделывания картофеля в России [10]. В последние годы из-за потепления климата участились случаи сильного поражения растений картофеля альтернариозом в Центральном и Северо-Западном регионах [11, 12].

В ограничении развития альтернариоза картофеля большое значение имеет возделывание устойчивых сортов, использование качественного посадочного материала, поддержание оптимального для растений питательного режима за счет внесения полного минерального удобрения с повышенными нормами калия [13]. При этом наиболее действенной мерой борьбы с данным заболеванием картофеля является химический метод защиты. Положительные результаты по снижению развития альтернариоза получены при применении в схемах защиты картофеля препаратов на основе азоксистробина, боскалида, дифеноконозола, мандипропамида, пираклостробина, пириметанила, флуапирама и их комбинаций [12, 1416]. В то же время отмечена недостаточно высокая эффективность препаратов, содержащих манкоцеб, фамоксадон, флуазинам, хлороталонил и цимоксанил, предназначенных для защиты посадок картофеля от фитофтороза и альтернариоза [13, 17, 18].

Современные тенденции в защите культурных растений от патогенов выражаются в повышении объемов применения биологических средств. Например, показана высокая эффективность предпосадочной обработки клубней и двукратного опрыскивания растений в период вегетации грибами Trichoderma sp. и бактерией Bacillus thuringiensis для защиты картофеля от альтернариоза [19]. По результатам обработки посадочного материала и 3-кратного опрыскивания вегетирующих растений препаратами на основе штаммов В-10 ВИЗР и М-22 ВИЗР B. subtilis отмечено снижение развития альтернариоза в фазе роста клубней на 52.4 и 44.7%, тогда как при использовании химического стандарта Ридомил Голд, содержащего манкоцеб, снижение развития заболевания составило 60.3% [20].

Полевые испытания эффективности фунгицидов в защите культурных растений от фитопатогенов должна предварять лабораторная оценка их активности в отношении чистых культур грибов-возбудителей заболевания, которая позволяет быстро оценить действие препаратов и сравнить их между собой, тогда как полевые испытания требуют больше времени и подвержены влиянию множества факторов.

Цель работы – лабораторная оценка действия современных и перспективных фунгицидов (химических и биологических) в отношении возбудителей альтернариоза картофеля A. solani и A. tenuissima.

МЕТОДИКА ИССЛЕДОВАНИЯ

В качестве объектов исследования из коллекции чистых культур микрооранизмов лаборатории микологии и фитопатологии ВИЗР были выбраны 2 штамма гриба A. solani MF P628031 и MF P747151, выделенные из листьев картофеля из Адыгеи и Камчатского края соответственно. Также в исследование был включен штамм A. tenuissima MF P713021, выделенный из листьев картофеля из республики Дагестан.

Лабораторную оценку действия 10 химических и 9 биологических препаратов в отношении возбудителей альтернариоза картофеля проводили во Всероссийском НИИ защиты растений в 2022 г. Химические фунгициды были представлены одно- и двухкомпонентными препаратами, зарегистрированными на территории РФ для борьбы с альтернариозом (табл. 1). Среди выбранных биологических препаратов восемь имели в составе разные штаммы бактерий Bacillus spp., один препарат – микромицет Trichoderma harzianum Rifai. Из 9‑ти изученных биологических препаратов пять зарегистрированы на территории РФ для борьбы с альтернариозом картофеля. Препарат БФТИМ КС-2, Ж не имеет регистрации на картофеле, 3 препарата являются экспериментальными.

Таблица 1.

Химические и биологические препараты, включенные в исследование

Препарат Действующее вещество (д.в.)/биологический агент (б.а.) Норма расхода, кг, л* Концентрация д.в. (г/л)/б.а. (КОЕ/л) в рабочем растворе**
Химические препараты
Акробат МЦ, ВДГ Манкоцеб 600 г/кг + диметоморф 90 г/кг 2.00 4.00 + 0.60
Дискор, КЭ Дифеноконазол 250 г/л 0.40 0.33
Зорвек Энкантия, СЭ Фамоксадон 300 г/л + оксатиапипролин 30 г/л 0.65 0.65 + 0.06
Луна Транквилити, КС Пириметанил 375 г/л + флуопирам 125 г/л 0.80 1.00 + 0.33
Пеннкоцеб, СП Манкоцеб 800 г/кг 1.60 4.27
Ревус Топ, СК Дифеноконазол 250 г/л + мандипропамид 250 г/л 0.60 0.50 + 0.50
Ридомил Голд МЦ, ВДГ Манкоцеб 640 г/кг + мефеноксам 40 г/кг 2.50 5.33 + 0.33
Сектин Феномен, ВфДГ Манкоцеб 500 г/кг + фенамидон 100 г/кг 1.25 2.08 + 0.42
Сигнум, ВДГ Боскалид 267 г/кг + пираклостробин 67 г/кг 0.30 0.27 + 0.07
Танос, ВДГ Фамоксадон 250 г/кг + цимоксанил 250 г/кг 0.60 0.50 + 0.50
Биологические препараты
Бактофит, СК Bacillus subtilis ИПМ 215 (БА-10000 ЕА/мл, 2 × 109 КОЕ/мл 2.00 1.30 × 1010
Бисолбисан, Ж B. subtilis Ч-13, 108 КОЕ/мл 3.00 109
БФТИМ КС-2, Ж B. amyloliquefaciens ВКПМ В-11141, 109 КОЕ/мл 4.00 1.30 × 1010
Витаплан, СП B. subtilis ВКМ-В-2604D 1010 КОЕ/г + + B. subtilis ВКМ-В-2605D 1010 КОЕ/г 0.08 2.70 × 109 + 2.70 × 109
Трихоцин, СП Trichoderma harzianum Г-30 ВИЗР, 1010 КОЕ/г 0.08 2.70 × 109
Фитоспорин-М, Ж B. subtilis 26 Д 109 КОЕ/мл 4.00 1.30 × 1010
Экспериментальный-1, Ж B. mojavensis PS 17, 5 × 109 КОЕ/мл 3.00 5.00 × 1010
Экспериментальный-2, С B. subtilis 5И-12/23, 1010 КОЕ/мл 5.00 8.30 × 1011
Экспериментальный-3, Ж B. subtilis RCAM01729, 109 КОЕ/мл 3.00 1010

* По инструкции производителя. **Из расчета 300 л рабочего раствора/га обрабатываемой площади.

Препараты разводили в стерильной воде таким образом, чтобы получить концентрацию рабочего раствора для обработки 1 га (300 л воды), содержащего максимальную норму расхода, рекомендованную для использования производителем.

В чашках Петри с агаризованной средой Чапека стерильным пробочным сверлом диаметром 4 мм делали две лунки на расстоянии 1 см от края чашки. В каждую лунку вносили по 20 мкл раствора препарата. В контрольном варианте в лунки вносили по 20 мкл стерильной воды. Предварительно культуры штаммов Alternaria spp. выращивали на среде Чапека в темноте при 24°С в течение 7 сут. Из выросших колоний вырезали диски диаметром 4 мм, которые мицелием вниз помещали на среду в центр каждой чашки Петри с препаратом. Через 7 сут инкубации (24°С, темнота) определяли диаметр колонии гриба, измеряя его по оси между лунками. Из полученной величины вычитали величину инокуляционного диска 4 мм. Эксперимент проводили в 3-х повторностях. Ингибирующее действие препарата на радиальный рост гриба определяли как отношение разницы диаметра колонии в контроле и в варианте к диаметру колонии в контроле, выраженное в %.

Для статистической обработки полученных данных использовали программы Microsoft Excel 2010 и Statistica 10.0, достоверность различий принимали при p < 0.05.

РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

На 7-е сутки после инокуляции размер колоний штаммов MF P628031 и MF P747151 A. solani оказался сходным и составил 65 ± 4 и 61 ± 2 мм соответственно, тогда как штамм гриба A. tenuissima продемонстрировал более высокую скорость роста (диаметр колонии 75 ± 1 мм).

Все химические препараты, включенные в исследование, подавляли рост грибов Alternaria spp. (табл. 2). Влияние фунгицидов на рост грибов A. solani не имело достоверных различий между штаммами: ингибирующее действие на A. solani MF P628031 и MF P747151 варьировало в диапазоне 46–80% и 40–74% соответственно и в среднем составило 63 ± 7%. Ингибирующее действие химических препаратов на рост штамма MF P713021 A. tenuissima в среднем составило 52 ± 11% (диапазон варьирования 33–78%). Штамм MF P713021 A. tenuissima оказался на 10–26% менее чувствительным к 6-ти препаратам, чем проанализированные штаммы A. solani, тогда как 4 препарата (Сигнум, Ревус Топ, Дискор, Луна Транквилити) подавляли рост всех штаммов Alternaria spp. в сходной степени. В среднем чувствительность штамма A. tenuissima ко всем химическим фунгицидам была достоверно меньше на 11% (p = 0.044).

Таблица 2.

Действие химических препаратов на рост грибов Alternaria spp.

Препарат Действующее вещество (д.в.) Диаметр колонии, мм Подавление роста, % от контроля
A. solani A. tenuissima A. solani A. tenuissima
MF P628031 MF P747151 MF P713021 MF P628031 MF P747151 MF P713021
Акробат МЦ Манкоцеб + + диметоморф 21.3 ± 1.3 23.0 ± 1.1 40.7 ± 1.7 67 69 46
Дискор Дифеноконазол 13.0 ± 1.1 16.3 ± 2.4 16.3 ± 0.7 80 73 78
Зорвек Энкантия Фамоксадон + + оксатиапипролин 30.3 ± 0.7 28.7 ± 8.8 47.7 ± 6.6 53 53 36
Луна Транквилити Пириметанил + + флуопирам 16.7 ± 0.7 15.7 ± 1.7 16.3 ± 1.3 74 74 78
Пеннкоцеб Манкоцеб 26.3 ± 1.3 22.3 ± 0.7 46.0 ± 1.1 59 63 38
Ревус Топ Дифеноконазол + + мандипропамид 15.3 ± 2.4 17.7 ± 0.7 24.0 ± 2.3 76 71 68
Ридомил Голд МЦ Манкоцеб + + мефеноксам 26.7 ± 3.5 24.7 ± 2.8 41.7 ± 0.7 59 66 44
Сектин Феномен Манкоцеб + + фенамидон 25.7 ± 3.3 31.7 ± 0.7 42.3 ± 1.3 60 54 43
Сигнум Боскалид + + пираклостробин 23.3 ± 1.7 28.7 ± 0.7 30.0 ± 0.1 64 59 60
Танос Фамоксадон + + цимоксанил 34.7 ± 1.7 36.7 ± 1.3 50.3 ± 1.7 46 40 33

Ранее была показана более низкая чувствительность штаммов мелкоспоровых видов Alternaria, включающих A. tenuissima, A. alternata (Fr.) Keissl. и другие, к манкоцебу, азоксистробину, флудиоксонилу, хлороталонилу, дифеноконазолу и флуазинаму по сравнению с штаммами A. solani [21]. Штаммы A. alternata, выделенные из картофеля в США, также в среднем оказались менее чувствительны к азоксистробину, чем штаммы A. solani [22, 23].

Среди проанализированных химических фунгицидов наиболее эффективно рост грибов Alternaria подавляли препараты Дискор и Ревус Топ, содержащие дифеноконазол и мандипропамид, а также препарат Луна Транквилити на основе пириметанила и флуопирама – их ингибирующее действие на штаммы Alternaria spp. составило 68–78% (рис. 1). Менее эффективными в отношении грибов Alternaria оказались препараты, содержащие манкоцеб (Акробат, Ридомил Голд, Пеннкоцеб, Сектин Феномен), ингибирующее действие которых на рост проанализированных штаммов в среднем оказалось равно 56 ± 6%.

Рис. 1.

Действие химических препаратов на рост штаммов Alternaria solani MF P747151 (а), MF P628031 (б) и A. tenuissima MF P628031 (в). 1, 5, 9 – Дискор, КЭ, 2, 6, 10 – Луна Транквилити, КС, 3, 7, 11 – Ревус Топ, СК, 4, 8, 12 – контроль.

Ранее при исследовании влияния фунгицидов на рост 301 изолята Alternaria spp., выделенных из картофеля и томата в 5-ти регионах России, была выявлена более высокая эффективность дифеноконазола в сравнении с манкоцебом: в 172 и 1605 раз для A. solani и мелкоспоровых штаммов Alternaria соответственно [21]. В полевых испытаниях с искусственной инокуляцией растений картофеля грибами Alternaria в Австралии дифеноконазол более эффективно ограничивал развитие заболевания в сравнении с азоксистробином и боскалидом [24].

Анализ влияния 12 действующих веществ (д.в.) и их комбинаций на рост 26 штаммов A. solani показал более высокую эффективность пириметанила, а также его комбинации с флуопирамом, по сравнению с д.в. из классов имидазолины (фенамидон), карбоксамиды (боскалид, пентиопирад), оксизолиндиндионы (фамоксодон), пиридинил-этилбензамиды (флуопирам), стробилурины (азоксистробин, пикоксистробин, пираклостробин, трифлоксистробин) и хлороталонилом [25]. Установлено, что резистентность штаммов A. solani к флуопираму встречается реже, чем к д.в. из других классов [25].

В нашем исследовании препарат Сигнум на основе пираклостробина продемонстрировал среднюю эффективность (60%) в ограничении роста штаммов Alternaria spp. Известно, что штаммы Alternaria spp. могут приобретать резистентность к д.в. класса стробилурины [22, 23, 26]. Наличие мутации гена cyt b, ответственной за резистентность к стробилуринам у грибов Alternaria, можно диагностировать с помощью ПЦР [23]. Анализ чувствительности штаммов Alternaria, выделенных из картофеля и томата в России, не выявил резистентные штаммы в популяции возбудителей альтернариоза в 7-ми регионах европейской части страны и на Дальнем Востоке [21].

Все биологические препараты, включенные в исследование, также подавляли рост грибов Alternaria spp. (табл. 3). Ингибирующее действие препаратов на рост штаммов A. solani варьировало в диапазоне 20–65% (в среднем 53 ± 5%), тогда как ограничение роста штамма MF P713021 A. tenuissima составило от 26 до 66% и в среднем оказалось равно 52 ± 11%. Достоверные различия в действии проанализированных биологических препаратов на рост разных штаммов Alternaria spp. не выявлены. Исключение составил препарат Трихоцин на основе T. harzianum, ингибирующее действие которого на рост как 2-х штаммов MF P628031 и MF P747151 A. solani, так и штамма MF P713021 A. tenuissima, существенно варьировало от 46 до 65% (рис. 2).

Таблица 3.

Действие биологических препаратов на рост грибов Alternaria spp.

Препарат Биологический агент (б.а.) Диаметр колонии, мм Подавление роста, % от контроля
A. solani A. tenuissima A. solani A. tenuissima
MF P628031 MF P747151 MF P713021 MF P628031 MF P747151 MF P713021
Бактофит B. subtilis ИПМ 215 28.0 ± 3.0 27.0 ± 3.0 33.7 ± 0.7 57 56 55
БФТИМ КС-2 B. amyloliquefaciens ВКПМ В-11141 25.3 ± 0.7 23.3 ± 1.7 25.7 ± 0.7 61 62 66
Фитоспорин-М B. subtilis 26 Д 28.7 ± 3.5 28.7 ± 2.4 34.3 ± 0.7 56 53 54
Витаплан B. subtilis ВКМ-В-2604D + + B. subtilis ВКМ-В-2605D 27.0 ± 1.1 24.3 ± 2.6 28.7 ± 1.3 58 60 62
Трихоцин T. harzianum Г-30 ВИЗР 28.7 ± 1.3 21.3 ± 2.4 40.7 ± 2.8 56 65 46
Бисолбисан B. subtilis штамм Ч-13 40.3 ± 3.3 48.7 ± 1.7 55.0 ± 6.3 38 20 26
Экспериментальный-1 B. mojavensis штамм PS 17 29.3 ± 3.5 24.7 ± 1.3 35.0 ± 2.3 55 59 53
Экспериментальный-2 B. subtilis штамм 5И-12/23 35.0 ± 3.0 22.0 ± 8.5 39.3 ± 2.4 46 64 47
Экспериментальный-3 B. subtilis штамм RCAM01729 34.3 ± 0.7 32.3 ± 8.2 39.3 ± 0.7 47 47 47
Рис. 2.

Действие биологических препаратов на рост штаммов Alternaria solani MF P747151 (а), MF P628031 (б) и A. tenuissima MF P628031 (в). 1, 5, 9 – БФТИМ КС-2, Ж, 2, 6, 10 – Бисолбисан, Ж, 3, 7, 11 – Трихоцин, СП, 4, 8, 12 – контроль.

Среди проанализированных биологических препаратов наиболее эффективно рост грибов Alternaria подавляли препараты БФТИМ КС-2 и Витаплан на основе B. amyloliquefaciens и B. subtilis, их ингибирующее действие в среднем составило 63 ± 3 и 60 ± 2% соответственно. Наименее эффективным в отношении грибов Alternaria spp. оказался препарат Бисолбисан, также содержащий в составе споры B. subtilis (ингибирующее действие равно 28 ± 10%). Стоит отметить, что среди всех проанализированных биологических препаратов Витаплан характеризовался наименьшей концентрацией биологического агента в рабочем растворе – 1×109 КОЕ/л.

Ранее среди 8-ми изученных биологических агентов – штаммов бактерий родов Bacillus, Flavobacterium, Pseudomonas и грибов Trichoderma, – штаммы B. thuringiensis и Trichoderma sp. наиболее эффективно ингибировали прорастание спор A. solani [27]. В нашем исследовании штаммы B. amyloliquefaciens и B. subtilis в составе 2-х биопрепаратов продемонстрировали эффективность ингибирования роста грибов Alternaria, сопоставимую с показателями химических препаратов. Известно, что бактерии Bacillus могут образовывать вторичные метаболиты с антифунгальной активностью в отношении широкого спектра грибов [28], в т.ч. циклические липопептиды, белки [29] и летучие органические соединения (ЛОС) [30]. Показано, что ЛОС, продуцируемые бактериями B. amyloliquefaciens, ограничивают рост мицелия и ингибируют прорастание спор A. solani [30], и могут быть использованы как биорациональные пестициды для защиты растений.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В результате лабораторной оценки действия 19 фунгицидов показано, что все проанализированные препараты подавляли рост грибов Alternaria: ингибирующее действие химических и биологических фунгицидов варьировало в диапазоне 33–80 и 20–66% соответственно.

Среди 10 химических фунгицидов препараты Дискор и Ревус Топ, содержащие дифеноконазол и мандипропамид, а также препарат Луна Транквилити на основе пириметанила и флуопирама наиболее эффективно подавляли рост грибов A. solani и A. tenuissima. При этом широко используемые в схемах защиты картофеля от болезней препараты на основе манкоцеба не были столь эффективными, особенно в отношении вида A. tenuissima.

Среди 9-ти биологических препаратов наиболее активными в отношении грибов Alternaria оказались препараты БФТИМ КС-2 и Витаплан на основе B. amyloliquefaciens и B. subtilis, их эффективность была сопоставима с многими анализированными химическими препаратами. Препарат БФТИМ КС-2 на данный момент не имеет регистрации к применению на посадках картофеля в защите от альтернариоза.

Полученные результаты дали оценку действия химических и биологических препаратов на рост чистых культур грибов Alternaria – возбудителей альтернариоза. Необходимо проведение полевых испытаний препаратов в регионах возделывания культуры с разными природно-климатическими условиями, для создания адекватной стратегии защиты картофеля от альтернариоза.

Список литературы

  1. Ганнибал Ф.Б. Мониторинг альтернариозов сельскохозяйственных культур и идентификация грибов рода Alternaria. СПб.: ВИЗР, 2011. 70 с.

  2. Воловик А.С., Литун Б.П. Вредоносность заболеваний картофеля // Защита растений. 1975. № 7. С. 4–6.

  3. Kuczynska J. Wplyw niektorich czynnikow na wystepowanie i szkodliwost alternariozi ziemniaka // Biul. Inst. Ziemn. 1992. V. 41. P. 73–87.

  4. Иванюк В.Г., Банадысев С.А., Журомский Г.К. Защита картофеля от болезней, вредителей и сорняков. Минск: Белорусский НИИ картофелеводства, 2003. 550 с.

  5. Olanya O.M., Honeycutt C.W., Larkin R.P., Griffin T.S., He Z., Halloran J.M. The effect of cropping systemsand irrigation management on development of potato earlyblight // J. Gener. Plant Pathol. 2009. V. 75. P. 267–275.

  6. Yellareddygari S.K.R., Taylor R.J., Pasche J.S., Zhang A., Gudmestad N.C. Predicting potato tuber yield loss due to early blight severity in the Midwestern United States // Europ. J. Plant Pathol. 2018. V. 152 (1). P. 71–79.

  7. Квасникова М.С. Устойчивость сортов и гибридов картофеля к макроспориозу в полевых условиях лесостепной зоны Приморского края // Картофель на Дальнем Востоке. Владивосток, 1976. С. 152–154.

  8. Коняева Н.М., Золотарева Е.В., Куликова Г.А., Локтина Г.И. Возбудители грибных болезней картофеля // Возбудители болезней сельскохозяйственных растений Дальнего Востока. М.: Наука, 1980. С. 265–268.

  9. Ганнибал Ф.Б. Видовой состав, таксономия и номенклатура возбудителей альтернариоза листьев картофеля // Вестн. защиты раст. 2007. № 5. С. 142–148.

  10. Орина А.С., Ганнибал Ф.Б., Левитин М.М. Видовое разнообразие, биологические особенности и география грибов рода Alternaria, ассоциированных с растениями семейства Solanaceae // Микол. и фитопатол. 2010. Т. 44. № 2. С. 150–159.

  11. Смук В.В., Шпанев А.М. Изучение влияния минерального питания на развитие и вредоносность альтернариоза картофеля на Северо-Западе России // Агрохим. вестн. 2020. № 6. С. 43–47.

  12. Денискина Н.Ф., Ивашова О.Н., Дыйканова М.Е., Гаспарян И.Н., Левшин А.Г. Устойчивость сортов картофеля раннего к альтернариозу в Центральном регионе // Защита и карантин раст. 2021. № 5. С. 40–41.

  13. Мельникова Е.С., Мелькумова Е.А., Кузнецова М.А. Пути снижения вредоносности альтернариоза картофеля // Вестн. Воронеж. ГАУ. 2011. № 4 (31). С. 30–32.

  14. Деренко Т.А., Кузнецова М.А., Сметанина Т.И., Козловский Б.Е., Филиппов A.B. Влияние припосадочного внесения Квадриса на снижение вредоносности фитофтороза и альтернариоза картофеля в период вегетации растений // Защита картофеля. 2014. № 1. С. 39–40.

  15. Приходько Е.С., Хохлов В.П., Бибик Т.С., Россинская Т.М., Селицкая О.В., Смирнов А.Н. Влияние метеоусловий на развитие патокомплекса Alterna-riaFusarium в посадках картофеля // Достиж. науки и техн. АПК. 2019. Т. 33. № 1. С. 14–22.

  16. Кузнецова М.А., Денисенков И.А., Рогожин А.Н., Сметанина Т.И., Демидова В.Н., Стацюк Н.В. Определение оптимальной стратегии защиты картофеля от альтернариоза в условиях эпифитотии // Сб. ст. по мат-лам II Международ. научн.-практ. конф. “Современные подходы и методы в защите растений”. Екатеринбург, 2020. С. 40–41.

  17. Сергиенко В.Г., Богданович С.В. Оценка токсикологического действия фунгицидов на возбудителя альтернариоза картофеля // Картофелеводство. Сб. научн. тр. Минск, 2008. Т. 14. С. 440–446.

  18. Смук В.В., Шпанев А.М. Проблемы химической защиты посадок картофеля от альтернариоза // Сб. ст. по мат-лам II Международ. научн.-практ. конф. “Современные подходы и методы в защите растений”. Екатеринбург, 2020. С. 50–51.

  19. Алдиба А.Ш., Еськов И.Д. Влияние обработки различными микроорганизмами на развитие альтернариоза (Alternaria solani) и урожайность картофеля // Аграрн. научн. журн. 2021. № 3. С. 4–8.

  20. Байрамбеков Ш.Б., Корнева О.Г. Биопрепараты против альтернариоза картофеля // Защита и карантин раст. 2009. № 8. С. 30–31.

  21. Побединская М.А., Плуталов П.Н., Романова С.С., Кокаева Л.Ю., Николаев А.В., Александрова А.В., Еланский С.Н. Устойчивость возбудителей альтернариоза картофеля и томата к фунгицидам // Микол. и фитопатол. 2012. Т. 46. № 6. С. 401–408.

  22. Tymon L., Johnson D. Fungicide resistance of two species of Alternaria from potato in the Columbia Basin of Washington // Plant Disease. 2014. V. 98. P. 1648–1653.

  23. Ding S., Halterman D., Meinholz K., Gevens A. Distribution and stability of qoi fungicide resistance in populations of potato pathogenic Alternaria spp. in Wisconsin // Plant Disease. 2019. P. 103.

  24. Horsfield A., Wicks T., Davies K. Effect of fungicide use strategies on the control of early blight (Alternaria solani) and potato yield // Austral. Plant Pathol. 2010. V. 39. P. 368–375.

  25. Fairchild K., Miles T., Wharton P. Assessing fungicide resistance in populations of Alternaria in Idaho potato fields // Crop Protect. 2013. V. 49. P. 31–39.

  26. Pasche J.S., Piche L.M., Gudmestad N.C. Effect of the F129L mutation in Alternaria solani on fungicides affecting mitochondrial respiration // Plant Disease. 2005. V. 89. P. 269–278.

  27. Aldiba A., Escov I. Biological control of early blight on potato caused by Alternaria solani by some bioagents // Proceed. 1st Inter. Symp. Innovat. Life Sci. (ISILS 2019). 2019. P. 103–107.

  28. Chaurasia B., Pandey A., Palni L.M.S., Trivedi P., Kumar B., Colvin N. Diffusible and volatile compounds produced by an antagonistic Bacillus subtilis strain cause structural deformations in pathogenic fungi in vitro // Microbiol. Res. 2005. V. 160. P. 75–81.

  29. Kim P., Bai H., Bai D., Chae H., Chung S., Kim Y. et al. Purification and characterization of a lipopeptide produced by Bacillus thuringiensis CMB26 // J. Appl. Microbiol. 2004. V. 97. P. 942–949.

  30. Zhang D., Yu S., Yang Y., Zhang J., Zhao D., Pan Y., Fan S., Yang Z., Zhu J. Antifungal effects of volatiles produced by Bacillus subtilis Against Alternaria solani in potato // Front. Microbiol. 2020. V. 11. P. 1196.

Дополнительные материалы отсутствуют.