Почвоведение, 2023, № 1, стр. 74-80
Микробиологическая активность чернозема при совместном применении хлорида калия с азотными удобрениями
К. В. Павлов a, Е. В. Морачевская a, *, А. П. Власова a, Н. А. Манучарова a
a МГУ им. М.В. Ломоносова
119991 Москва, Ленинские горы, 1, Россия
* E-mail: agrosoil@mail.ru
Поступила в редакцию 14.06.2022
После доработки 20.07.2022
Принята к публикации 28.07.2022
- EDN: JKHJIQ
- DOI: 10.31857/S0032180X22600822
Аннотация
С целью оценки возможного токсического эффекта от хлорида калия, применяемого совместно с минеральными азотными удобрениями, изучалась структурная и функциональная составляющие микробного комплекса чернозема, в частности, его прокариотный компонент. Объектом исследований являлись почвенные образцы чернозема типичного, отобранные из вегетационного опыта с вариантов с внесением азотно-фосфорных и азотно-фосфорно-калийных удобрений. Для получения устойчивого действия легкорастворимых солей на микробное сообщество почвы проведено долгосрочное компостирование почвенных образцов при чередовании циклов увлажнения и высушивания почвы. В течение первых двух лет компостирования обнаружено подавление эмиссии диоксида углерода, которое нивелировалось только спустя 5 лет. Первоначальное сокращение эмиссии углекислого газа, как и активности денитрификации, достигало двукратных значений. Негативный эффект проявлялся при содержании в почве хлоридов и нитратов существенно ниже градации, установленной для слабозасоленных почв. Длительное компостирование образцов плодородного чернозема под действием хлорида калия привело к уменьшению численности и биомассы метаболически активного прокариотного комплекса, что подтверждает его токсическое действие на микробное сообщество почвы. Определены устойчивые и чувствительные к повышенному содержанию хлоридов и нитратов в почве представители прокариотного комплекса. Среди представителей домена Bacteria практически все оказались чувствительными за исключением двух филлумов Firmicutes и Verrucomicrobia. Для некоторых представителей филогенетической группы Actinobacteria чувствительность к ионам хлора подтверждается на родовом уровне (Streptomyces и Micromonospora). Для домена Archaea представители филума Euryarchaeota выявляются как наиболее устойчивые к наличию хлоридов. Таким образом, подавление микробиологической активности чернозема при внесении хлорида калия объясняет выявленное ранее уменьшение доступности питательных элементов для растений.
ВВЕДЕНИЕ
Применение в качестве калийного удобрения хлористого калия совместно с азотно-фосфорными удобрениями на плодородном черноземе может приводить к уменьшению биомассы растений и доступности для них основных питательных элементов [9]. Известно, что нарушение питания растений возникает в результате антагонизма между хлоридами и нитратами [13, 17, 18] или фосфатом [14, 16], вследствие чего их доступность будет сокращаться. Однако в аналогичных исследованиях на дерново-подзолистой почве такого явления не наблюдали [8]. Трансформация в почве различных соединений, в том числе вносимых вместе с удобрениями, осуществляется микробными сообществами, специфичными для каждого типа почв [1]. Поэтому было выдвинуто предположение, что наблюдаемый токсический эффект связан с падением уровня минерального питания растений вследствие влияния удобрений на функционирование микробного комплекса чернозема. Предварительные данные, полученные в лабораторных условиях методом инициации микробной сукцессии, подтверждали эту гипотезу. В варианте с внесением хлорида калия было обнаружено двукратное уменьшение эмиссии почвой углекислого газа. Промывание почвы несколько сокращало токсический эффект, что позволило связать его возникновение с содержанием в почве легкорастворимых солей. Но устойчивость негативного эффекта указывала на возможность существенных изменений в микробном комплексе почвы и важность его изучения [9].
По данным Ибекве с соавт. [15], высокие концентрации хлоридов в почве отрицательно сказываются на жизнедеятельности почвенных микроорганизмов. Высокие дозы этих солей могут привести к осмотическому стрессу, за которым следует потеря воды из микробных клеток и их лизис, что уменьшает содержание микробной биомассы в засоленных почвах по сравнению с незасоленными.
Целью работы явилась оценка влияния хлорид- и нитратсодержащих солей на разнообразие и активность микробного сообщества чернозема.
ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ
Объектом исследований явились смешанные почвенные образцы, отобранные из вегетационного опыта с вариантов с внесением азотно-фосфорных (NP) и азотно-фосфорно-калийных удобрений (NP + KCl). Удобрения в виде нитрата аммония, двойного суперфосфата и хлорида калия вносили в стандартных дозах 0.1 г/кг (что приблизительно соответствует 200 кг/га) равномерным способом в начале закладки опыта. Подробнее с условиями и результатами опыта можно ознакомиться в публикации [10]. В качестве контрольного варианта использовался образец почвы (КОНТ) без внесения удобрений. Почва контрольного варианта представляет собой верхнюю часть гумусово-аккумулятивного горизонта типичного чернозема, отобранного из-под старовозрастной лесополосы (№ 40), длительное время не находившейся в сельскохозяйственном использовании (Каменная степь, Воронежская область, Таловский район). Характеризуется высоким содержанием углерода – 4.7% и нейтральной реакцией среды: рНKCl 6.4, ${\text{р}}{{{\text{Н}}}_{{{{{\text{Н}}}_{{\text{2}}}}{\text{О}}}}}$ 7.0. Несмотря на то, что минеральная масса почвы с глубины 5–20 см не вскипает от соляной кислоты, в ней встречаются рыхлые карбонатные конкреции размером 1–3 мм, происхождение которых нуждается в дальнейшем исследовании. Незначительное количество карбонатных новообразований позволяет поддерживать устойчивыми кислотно-основные свойства почвы, которые не изменяются под влиянием применения удобрений и выращивания растений. Даже локальное формирование слабощелочных условий в почве, является важной особенностью чернозема, по сравнению с другими почвами (например, дерново-подзолистой), так как может усиливать токсическое действие солей. Предварительные данные по эмиссии диоксида углерода из почвы с вариантов NP и NPК в течение года, а также агрохимическая характеристика почвы и условий вегетационного опыта изложены ранее [9]. Анализ водной вытяжки осуществлялся до инкубации в соответствии с ГОСТ 26423-85 [11].
Для оценки микробиологической активности почвы был проведен лабораторный эксперимент методом инициации микробной сукцессии [3, 5, 6].
После отбора образцов почва (5 г) находилась в пенициллиновых флаконах (8-кратная повторность для каждого варианта) при минимальной влажности, близкой к влаге завядания растений (20% от предельно полевой влагоемкости (ППВ)). При изучении эмиссии углекислого газа и закиси азота в почвенных образцах влажность увеличивали до оптимальной – 60% от ППВ. Эмиссия СО2 из почвы измерялась через год, 2 и 5 лет от начала компостирования при чередовании циклов увлажнения и высушивания в интервале от 20 до 60% от ППВ (один цикл соответствовал 6 мес.). Подробное описание измерения эмиссии углекислого газа приведено ранее [10]. Изучение эмиссии диоксида углерода из исследуемых образцов проводилось на газовом хроматографе с детектором по теплопроводности (модель 3700) [5]. Длина колонки 3 м, наполнитель – Полисорб-1. Скорость потока газа-носителя (He) – 25 мл/мин. Активность денитрификации изучалась по интенсивности эмиссии закиси азота (N2O) из почвенных образцов в параллельных микрокосмах, где предварительно искусственно создавались анаэробные условия, оптимальные для восстановления нитратов в почве (газовая фаза над почвенными образцами замещалась инертным газом (N2)). С целью остановки процесса денитрификации на моменте образования закиси азота в микрокосмы добавлялся ацетилен (С2Н2), блокирующий заключительный этап процесса – работу фермента редуктазы закиси азота [6].
Оценку численности и структуры прокариотного комплекса проводили с помощью молекулярно-биологических и люминесцентно-микроскопического методов с использованием различных флюорохромов (окраски акридином оранжевым и Cy3). Подсчет сделан с использованием люминесцентного микроскопа Zeiss microscope axioskop 2 plus (Германия).
Учет численности метаболически активных прокариот производился методом флуоресцентной гибридизации клеток in situ методом FISH. В его основе лежит реакция гибридизации между искусственно созданным флуоресцентным РНК-зондом и комплементарной ему нуклеотидной последовательностью участка 16S рибосомальной PНК, что позволяет учесть только количество метаболически активных представителей различных филумов. Были применены зонды, специфичные для доменов Archaea и Bacteria, а также для отдельных филогенетических групп представителей прокариот [4].
РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
Анализ водной вытяжки показал, что как по содержанию хлоридов (табл. 1), так и по величине удельной электропроводности, значения в вариантах с внесением солей меньше значений, характерных для засоленных почв. Максимальная удельная электропродность – 0.36 дСм/м, наблюдается на варианте NP, в то время как минимальное засоление по электропроводности – >0.6 дСм/м. Порог токсичности для хлорида – 0.3 смоль/кг почвы, а его максимальное значение отмечалось на варианте NP + Cl и составило 0.17 смоль/кг. Необходимо подчеркнуть, что содержание нитратов при анализе водной вытяжки для оценки засоления обычно не нормируется [2].
Таблица 1.
Вариант | Сl– | ${\text{NO}}_{3}^{ - }$ | Удельная электропроводность, дСм/м | ||
---|---|---|---|---|---|
мг/100 г | смоль/кг | Мг N/100 г | смоль/кг | ||
Контроль | <0.01 | <0.002 | 0.50 | 0.04 | 0.07 |
NP | 0.70 | 0.02 | 15.6 | 1.11 | 0.36 |
NP + KCl | 6.00 | 0.17 | 14.0 | 1.00 | 0.34 |
НСР0.05 | 0.50 | 0.01 | 1.20 | 0.09 | 0.04 |
Порог токсичности | – | 0.3* | – | – | >0.6 |
* По [7].
Удельная электропроводность характеризует общее содержание солей в почве, а в эксперименте общее содержание солей складывается в основном из хлоридов и, особенно, нитратов. Отметим повышенное содержание нитратов в почве, что в 1.5 раза больше внесенной дозы азотных удобрений (10 мг N/100 г почвы). Указанные особенности возможны для чернозема с высоким содержанием гумуса при внесении азотных удобрений и благоприятным водно-тепловым режимом, формирующимся в условиях вегетационного опыта. Все эти факторы способствуют возрастанию микробиологической активности и минерализации органического вещества, а, следовательно, увеличению содержания нитратов в почве. Кроме того, отмечается негативный эффект действия хлорида калия на содержание нитратов (уменьшение с 15.6 до 14.0 мг N/100 г почвы).
Применение азотно-фосфорных удобрений способствовало увеличению интенсивности микробного дыхания – возрастанию эмиссии СО2 из почвы по сравнению с контролем (рис. 1). Контрольная почва, на которой удобрения не применяли, занимала промежуточное положение по интенсивности микробного дыхания по сравнению с вариантами NP и NP + KCl. Внесение хлорида калия в почву приводило к подавлению микробиологической активности по сравнению с контрольным образцом, что указывает на проявление токсического эффекта соли в отношении активности микробного сообщества.
На вариантах с внесением хлорида калия сокращение эмиссии углекислого газа наблюдалось в течение двух лет и постепенно нивелировалось к пятому году сукцессии. Отмеченная особенность может быть связана с субстратным ингибированием, то есть более быстрым уменьшением содержания доступного углерода в почве на вариантах с более интенсивным дыханием и, следовательно, постепенным его выравниванием.
Почва с вариантов, где вносили NP и NPK спустя год протестирована на активность процесса денитрификации (рис. 2).
За первую неделю сукцессии, инициированной увлажнением, эмиссия N2O под влиянием хлорида калия уменьшилась практически в 2 раза. Абсолютные величины эмиссии закиси азота, как и значения эмиссии углекислого газа, показали почти двукратное сокращение активности денитрификации на варианте с применением хлорида калия. Отмеченные особенности в эмиссии газов указывают на схожие закономерности, определяемые микробиологической активностью почвы и требуют более подробного непосредственного изучения микробного сообщества почвы.
Дальнейшая характеристика микробного сообщества охватывает его метаболически активный прокариотный компонент, поскольку именно эта часть сообщества считается наиболее приспособленной к условиям пониженной влажности, в условиях которой и проходил поставленный эксперимент.
На вариантах с применением азотно-фосфорных удобрений отмечено возрастание численности и биомассы метаболически активных представителей прокариотного комплекса микроорганизмов по сравнению с контролем. По результатам исследований других авторов известно, что увеличение обеспеченности почвы органическим углеродом и общим азотом приводит к закономерному постепенному росту количества метаболически активных клеток как архей, так и бактерий. При этом отклик численности бактерий на увеличение содержания Сорг и Nобщ в 5 раз выше, чем архей [12].
Однако добавление хлорида по фону азотно-фосфорных удобрений имело негативное действие, что наиболее контрастно отразили микробиологические показатели (табл. 2).
Таблица 2.
Показатель | Контроль | NP | NP + KCl | НСР0.05 |
---|---|---|---|---|
Общая биомасса, мкг/г почвы | 134.1 | 163.9 | 114.3 | 48.6 |
Биомасса метаболически активных прокариот, мкг/г почвы | 128.3 | 139.4 | 104.6 | 32.4 |
Выявлено влияние удобрений | ||||
Gammaproteobacteria | 5.3 | 9.2 | 8.8 | 2.8 |
Deltaproteobacteria | 18.2 | 5.0 | 5.3 | 8.5 |
Acidobacteria | 8.4 | 4.8 | 2.6 | 2.8 |
Выявлено влияние хлоридов | ||||
Alphaproteobacteria | 15.5 | 15.0 | 7.9 | 5.6 |
Bacteroidetes | 23.4 | 49.1 | 14.8 | 12.7 |
Firmicutes | 1.3 | 1.3 | 7.9 | 5.7 |
Применение хлорида калия значимо уменьшило содержание биомассы метаболически активного прокариотного комплекса, что подтверждает результаты, полученные по эмиссии СО2 и N2O и также указывает на токсический эффект от внесения хлоридов (рис. 3). Другими словами, токсическое влияние хлорида выражается в существенном уменьшении позитивного действия азотно-фосфорных удобрений. Отмеченная закономерность хорошо прослеживается на примере численности представителей филогенетической группы Bacteroidetes, которая хорошо коррелирует с общей численностью микроорганизмов. По сравнению с другими филогенетическими группами домена Bacteria, численность метаболически активных представителей Bacteroidetes наиболее резко возрастает при внесении в почву азотно-фосфорных удобрений и микробное сообщество становится доминирующим. С применением хлоридов на фоне азотно-фосфорных удобрений отмеченная закономерность не наблюдается.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Внесение хлорида калия на фоне азотно-фосфорных удобрений снижает активность почвенного микробного сообщества, что выражается в значимом сокращении дыхания (эмиссии СО2) и нитратного дыхания (эмиссии N2O) из почвенных образцов чернозема, отобранных из вегетационного опыта и компостировавшихся при чередовании увлажнения и высушивания почвы. Уменьшение интенсивности дыхания было устойчивым в течение двух лет последействия удобрений, постепенно нивелируясь к пятому году наблюдения.
Негативный эффект хлорида калия на микробиологические свойства плодородного чернозема проявляется при отсутствии засоления почвы, то есть при содержании в почве как общего количества легкорастворимых солей, так и хлоридов, существенно ниже градации, установленной для слабозасоленных почв.
При долгосрочном компостировании хлорида калия совместно с азотно-фосфорными удобрениями, установлено снижение численности и биомассы метаболически активного прокариотного комплекса чернозема, что подтверждает закономерности, полученные по эмиссии СО2 и N2O. Определены устойчивые и чувствительные представители прокариотного комплекса к повышенному содержанию хлоридов и нитратов в почве.
В результате длительного компостирования в образцах плодородного чернозема под действием хлорида калия произошло снижение численности и биомассы метаболически активного прокариотного комплекса, что подтверждает его токсическое действие на микробное сообщество почвы. Определены устойчивые и чувствительные представители прокариотного комплекса к повышенному содержанию хлоридов и нитратов в почве. Среди представителей домена Bacteria практически все группы оказались чувствительными за исключением представителей двух групп Firmicutes и Verrucomicrobia. Для некоторых представителей филогенетической группы Actinobacteria чувствительность к ионам хлора подтверждается на родовом уровне (Streptomyces и Micromonospora). Для домена Archaea представители филума Euryarchaeota выявляются как наиболее устойчивые к наличию ионов хлора.
Таким образом, полученные результаты подтверждают гипотезу о снижении микробиологической активности чернозема под действием хлоридов на фоне внесения азотно-фосфорных удобрений и объясняют полученные ранее данные об уменьшении доступности питательных элементов для растений.
Список литературы
Благовещенская Г.Г., Духанина Т.М. Микробные сообщества почв и их функционирование в условиях применения средств химизации // Агрохимия. 2004. № 2. С. 80–88.
Классификация и диагностика почв России. Смоленск: Ойкумена, 2004. 342 с.
Манучарова Н.А., Власенко А.Н., Менько Е.В., Звягинцев Д.Г. Специфика хитинолитического микробногокомплекса в почвах, инкубируемых при различных температурах // Микробиология. 2011. Т. 80. № 2. С. 219–229.
Манучарова Н.А., Ксенофонтова Н.А., Каримов Т.Д., Власова А.П., Зенова Г.М., Степанов А.Л. Изменение филогенетической структуры метаболически активного прокариотного комплекса почв под влиянием нефтяного загрязнения // Микробиология. 2020. Т. 89. № 2. С. 222–234. https://doi.org/10.31857/S0026365620020093
Манучарова Н.А., Степанов А.Л., Умаров М.М. Особенности микробной трансформации азота в водопрочныхагрегатах почв разных типов // Почвоведение. 2001. № 10. С. 1261–1267.
Методы почвенной микробиологии и биохимии / Под ред. Д.Г. Звягинцева. М.: Изд-во Моск. ун-та, 1991. 304 с.
Мякина Н.Б., Аринушкина Е.В. Методическое пособие для чтения результатов химического анализа почв. М.: Изд-во МГУ, 1979. 62 с
Павлов К.В. Оптимизация калийного питания ячменя при локальном внесении калийных удобрений // Агрохимия. 2009. № 2. С. 28–34.
Павлов К.В., Клешканова Е.В., Новиков М.М., Манучарова Н.А. Влияние хлористого калия на эмиссию диоксида углерода из чернозема // Вестник Моск. ун-та. Сер. 17. Почвоведение. 2015. № 2. С. 49–52.
Павлов К.В., Новиков М.М. Влияние локального внесения калийных удобрений в чернозем на урожайность ячменя // Агрохимия. 2013. № 4. С. 48–54.
Практикум по агрохимии / Под ред. В.Г. Минеева. М.: Изд-во Моск. ун-та, 2001. 689 с.
Семенов М.В., Манучарова Н.А., Краснов Г.С., Никитин Д.А., Степанов А.Л. Биомасса и таксономическая структура микробных сообществ в почвах правобережья р. Оки // Почвоведение. 2019. № 8. С. 974–985. https://doi.org/10.1134/S0032180X19080124
Bar Y., Apelbaum A., Kafkafi U. et al. Relationship between chloride andnitrate and its effect on growth and mineral composition of avocadoand citrus plants // J. Plant Nutrition. 1997. № 20. P. 715–731.
Chabra R., Ringoet A., Lamberts D. Kinetics and Interaction of Chloride and Phosphate Absorption by Intact Tomato Plants (Lycopersicon esculentum Mill.) from a Dilute Nutrient Solution // Zeitschriftfür Pflanzenphysiologie. 1976. V. 78. № 3. P. 253–261.
Ibekwe A.M., Poss J.A., Grattan S.R., Grieve C.M., Suarez D. Bacterial diversity in cucumber (Cucumis sativus) rhizosphere in response to salinity, soil pH, and boron // Soil Biology and Biochemistry. 2010. V. 42. № 4. P. 567–575.
Massa D., Mattson N.S., Lieth H.J. Effects of saline root environment (NaCl) on nitrate and potassium uptake kinetics for rose plants: a Michaelis–Mentenmodelling approach // Plant Soil. 2009. № 318. P. 101–115. https://doi.org/10.1007/s11104-008-9821-z
Miklos E. et al. Nitrate and chloride transport interaction in grapevine // Acta Horticulturae. 2000. № 526. P. 249–254.
Wen Z., Tyerman S.D., Dechorgnat J., Ovchinnikova E., Dhugga K.S., Kaiser B.N. Maize NPF6 proteins are homologs of Arabidopsis CHL1 that are selective for both nitrate and chloride // Plant Cell. 2017. V. 29. P. 2581–2596. https://doi.org/10.1105/tpc.16.00724
Дополнительные материалы отсутствуют.