Растительные ресурсы, 2022, T. 58, № 3, стр. 222-235
Перспективы использования Aronia melanocarpa (Rosaceae) в онкологической практике
О. Ю. Рыбалкина 1, *, Т. Г. Разина 1, Е. П. Зуева 1, В. Ю. Андреева 2, Г. Н. Зюзьков 1, Г. И. Калинкина 2, В. В. Жданов 1
1 Томский национальный исследовательский медицинский центр РАН, Научно-исследовательский институт фармакологии и регенеративной медицины им. Е.Д. Гольдберга
г. Томск, Россия
2 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования
“Сибирский государственный медицинский университет”
г. Томск, Россия
* E-mail: olgatomsk87@gmail.com
Поступила в редакцию 17.12.2021
После доработки 26.04.2022
Принята к публикации 07.06.2022
- EDN: EPYXFN
- DOI: 10.31857/S0033994622030098
Аннотация
В обзоре представлены последние сведения из литературных источников и авторские данные о некоторых фармакологических свойствах Arónia melanocárpa (Michx.) Elliot. Особое внимание уделено исследованиям в области экспериментальной и клинической онкологии.
В последние годы наблюдается тенденция к более широкому применению различных природных биологически активных веществ в качестве средств для профилактики и лечения многих социально-значимых заболеваний [1]. Ярким примером источника таких веществ является Арония черноплодная (Aronia melanocarpa (Michx.) Elliot) [2]. Это растение высоко ценилось как противопростудное и вяжущее средство [3, 4].
Арония черноплодная – A. melanocarpa относится к семейству розоцветных Rosaceae и представляет собой многолетний листопадный кустарник высотой до 3 м. Продуктивный возраст ветвей – не более 10 лет. Восстановление куста происходит за счет ежегодно образующихся порослевых побегов и корневых отпрысков. Однолетние побеги красно-бурые, побеги старшего возраста – темно-серые. Корневая система мочковатая, состоит из вертикально и горизонтально расположенных корней. Листья обратнояйцевидные, с пильчатым краем, очередные, длиной 4–8 см и шириной 3–5 см, летом – ярко-зеленые, осенью – красные; верхняя сторона листьев кожистая, глянцевая, гладкая, темно-зеленая, нижняя – слабоопушенная с беловато-матовым оттенком. Цветки небольшие, белые, пятилепестные, двуполые, собраны в плотные щитковидные соцветия 5–6 см в диаметре. Цветет арония в мае–июне примерно через 2 недели после распускания листьев, цветение продолжается 12–15 дней. Арония – самоопыляемое растение, а позднее цветение исключает возможность повреждения цветков весенними заморозками, что обеспечивает хорошее ежегодное плодоношение. Плоды созревают в конце августа–начале сентября, плодоношение начинается с 3–5 лет. Плоды шаровидной формы, реже – сдавленно-округлые, черного цвета, с сизым налетом, диаметром 10–15 мм. Кожица плодов плотная, мякоть фиолетово-красная, почти черная, вкус кисло-сладкий, вяжущий [5].
Родина аронии – восточная часть Северной Америки. В 1935 г. растение попало сначала на Алтай, а затем распространилось по другим регионам. В культуру в России была введена И.В. Мичуриным, который рекомендовал ее для северного садоводства. Благодаря своей неприхотливости и зимостойкости A. melanocarpa интродуцирована почти во всех эколого-географических районах нашей страны, даже в тех, где затруднено возделывание других плодово-ягодных культур. Растение светолюбивое, к почвам малотребовательное. Размножают аронию семенами, вертикальными и горизонтальными отводками, делением куста, корнеотпрысками, зелеными черенками и прививкой [6].
Плоды A. melanocarpa являются официнальным лекарственным сырьем [7] и внесены в Государственный реестр лекарственных средств (гос. регистрация на сухие плоды № 85/301/5, на свежие – № 71/609/16, № 73/941/24) [8].
Плоды A. melanocarpa содержат множество соединений, таких как углеводы, органические кислоты, аминокислоты, минералы, витамины, ароматические соединения и полифенолы [9]. Химический состав плодов аронии зависит от многих факторов, включая климатические условия, состав почвы, зрелость ягод, методы сбора урожая и условия хранения [10].
Углеводы. Основными углеводами, входящими в состав плодов аронии черноплодной, являются сахара, а их общее содержание может варьировать от 68 до 158 г/кг [11]. Согласно анализу химического состава, среди сахаров можно выделить глюкозу (11–40 г/кг), фруктозу (14–42 г/кг) и сорбит (44–76 г/кг). Сахароза обнаружена в ягодах в количестве до 0.34% [12].
Органические кислоты. Содержание органических кислот в аронии черноплодной низкое (1.1–1.4%) [11, 12]. Лидирующее место среди кислот занимают L-яблочная (13.1 г/кг), лимонная (2.1 г/кг) и хинная (5.9 г/кг) кислоты. Также, помимо перечисленных кислот, в плодах аронии содержатся шикимовая, щавелевая и янтарная кислоты, однако их количество минимально [3, 11]. Исследование химического состава жмыха плодов аронии черноплодной показало, что в этом продукте содержится галактуроновая кислота [13].
Белки и аминокислоты. Общее содержание белка в плодах аронии черноплодной низкое (0.7 г/100 г сырой массы), белки в основном содержат в своем составе следующие аминокислоты: глутаминовую, аспарагиновую и аргинин [3, 14].
Минералы, микро- и макроэлементы и витамины. Минеральное содержание (зольность) свежих плодов аронии составляет 4–6 г/кг [3], сока – 5 г/кг [15]. Суммарное содержание золы в жмыхах находится на уровне 1.4–3.9% в сухом веществе, причем наиболее зольными являются семена [13].
Среди макроэлементов, входящих в состав аронии черноплодной, основными являются калий и кальций, которые играют ключевую роль в окислительно-восстановительных процессах, переносе металлов, а также в ряде важных биохимических реакций [16, 17]. Основными микроэлементами являются Fe, Zn, Cu, Mn и Sn [13, 17].
В соке, полученном из плодов аронии, обнаружены следующие витамины: B1 (25–90 мкг/100 мл), B2 (25–110 мкг/100 мл), B6 (30–85 мкг/100 мл), аскорбиновая кислота (5–100 мг/100 мл), пантотеновая кислота (50–380 мкг/100 мл) и ниацин (100–550 г/100 мл) [9].
Ароматические соединения. В настоящее время в аронии черноплодной идентифицировано более 48 ароматических соединений, из которых количественно лидируют амигдалин, циангидрин бензальдегида, синильная кислота, бензальдегид, бензиловый спирт, 2-фенилатанол, фенилацетальдегид [3]. Химический анализ сока из плодов аронии показал, что среди ароматических соединений основными являются следующие: спирты (48.9%), кетоны (30.3%), углеводороды (0.2%), кислоты (5.8%), альдегиды (2.9%), терпены (0.6%), сложные эфиры (0.3%). Наиболее распространенные соединения – 3-пентен-2-он (23.6%), 1-гексанол (18.2%) и 2-гексен-1-ол (11.1%) [17].
Полифенолы. Арония черноплодная является одним из самых богатых источников полифенолов среди других растений [18] и отличается высоким содержанием процианидинов, антоцианидинов и фенольных кислот, в то время как флавонолы присутствуют в небольших количествах [19].
При сборе плодов и приготовлении из них экстрактов всегда нужно учитывать, что полифенольный состав аронии значительно меняется в процессе их развития и созревания. Наибольшее содержание полифенолов наблюдается в незрелых плодах [20]. Также на полифенольный состав влияют погодные условия (температура и инсоляция) [10].
Основным полифенольным классом, в составе аронии черноплодной, являются процианидины, процентное содержание которых составляет 66%. Единицами процианидинов являются катехины, связанные между собой в основном C4–C6 и C4–C8 связями [19, 21]. Вторым по количественному содержанию является еще один класс полифенолов – антоцианы. Их содержание составляет около 25% от общего количества полифенолов. В основном они представляют собой смесь четырех различных гликозидов цианидина: 3-O-галактозида (68.9%), 3-O-глюкозида (1.3%), 3-O-арабинозида (27.5%) и 3-O-оксилозида (2.3%). Кроме того, в минимальном количестве в аронии представлены следующие антоцианы: пеларгонидин 3-O-галактозид и пеларгонидина арабинозид [19]. Общее содержание антоцианов может колебаться от 307 до 1480 мг на 100 г сырой массы [3].
Фенольные кислоты составляют 7.5% от всех полифенолов аронии. Основные соединения этой группы – хлорогеновая, неохлорогеновая и розмариновая кислоты [19, 22].
Флавонолы – группа полифенолов, содержащихся в аронии черноплоднов в минимальном количестве (около 1.3% от общего количества полифенолов). Согласно химическому анализу, по большей части это кверцетин [19]. В следовых количествах арония черноплодная содержит кверцетин-3-O-виканозид, а также кверцетин-3-робинобиозид [23]. Известно, что общее содержание флавонолов в листьях (180–786 мг/100 г) выше, чем в плодах (12–44 мг/100 г) [22].
Известно, что полифенолы, а также другие биологически активные вещества, содержащиеся в различных частях аронии черноплодной, обладают широким спектром биологической активности и низкой токсичностью [24].
В настоящее время, это растение представляет большой интерес для онкологов-экспериментаторов в качестве сырья для создания на его основе средств, для дополнительной терапии пациентов со злокачественными новообразованиями.
Во многих экспериментальных работах показано, что экстракты, выделенные из различных частей растения, оказывают противоопухолевое действие. Так, в экспериментах in vitro при использовании экстракта из плодов аронии, обогащенного антоцианами, наблюдали ингибирование пролиферации опухолевых клеток толстой кишки (HT-29) и мелономы кожи человека [25, 26]. В работе E.-S. Hwang (2018) показано, что 48-часовая инкубация клеток гепатоцеллюлярной карциномы человека SK-Hep1 совместно с экстрактом из листьев аронии приводит к торможению их роста [27]. Кроме того, добавление этого экстракта в культуру HL60 оказывало антипролиферативное действие в отношении опухолевых клеток [28]. Антоцианы из аронии способны связываться с рецепторами эстрогена ERα и β в клетках опухоли, оказывая воздействие, сходное с таковым официнального препарата тамоксифена, селективного модулятора рецепторов эстрогена, применяемого для лечения эстроген-зависимых опухолей молочной железы [29]. Противоопухолевое действие экстракта из плодов аронии показано на животных с перевиваемыми опухолями. Так, на мышах с меланомой В-16 применение антоциансодержащего комплекса (АСК) из аронии приводило к торможению роста первичной опухоли (на 26%): ее масса отличалась от контрольных значений в 1.3 раза [30]. Уменьшение массы первичной опухоли также отмечено у мышей с раком легкого-67, получавших изолированно АСК аронии [31].
Одним из механизмов, лежащих в основе противоопухолевого действия растительных экстрактов, является их воздействие на протеины – регуляторы клеточного цикла (р53, р21, р27, циклин D 1, циклин А), в результате чего подавляется деление опухолевых клеток [32]. Многими авторами показано, что использование экстракта из аронии черноплодной, обогащенного антоцианами, подавляет рост опухолевых клеточных линий благодаря активации циклин-зависимых киназ и подавлению циклиновых белков, которые являются ключевыми точками в основных фазах клеточного цикла (G1-S, S, G2-M) [33, 34].
Известно, что антоцианы вызывают апоптоз опухолевых клеток посредством высвобождения митохондриального цитохрома С, активации ферментов, высвобождающих каспазу, увеличения соотношения регуляторных белков (Bax и Bcl-2) [35]. В работе T. Sharif et al. [36] показано, что сок из аронии вызывает в клетках лейкемии человека усиление экспрессии опухолевого супрессора p73, активной каспазы 3 и подавляет экспрессию циклина B1 и эпигенетического интегратора UHRF1. Кроме того, сок значительно снижает потенциал митохондриальной мембраны и вызывает выброс цитохрома С в цитоплазму. Авторы показали, что противоопухолевая активность связана преимущественно с хлорогеновыми кислотами, некоторыми цианидиновыми гликозидами и производными кверцетина [36].
Еще одним механизмом запуска апоптоза с помощью экстрактов из аронии черноплодной, богатых антоцианами, является их влияние на активность топоизомераз. Ферменты топоизомеразы I и II играют жизненно важную роль в репликации ДНК, облегчая раскручивание суперспиральной ДНК. Следовательно, ингибирование активности топоизомеразы приводит к апоптозу [37]. В экспериментальных работах показано, что использование экстракта из плодов, приводит к снижению активности топоизомеразы I и II в опухолевых клетках HT-29 [38].
В литературе встречаются сведения об антиметастатических свойствах аронии черноплодной. Согласно экспериментальным данным, добавление экстракта из листьев аронии в опухолевую клеточную культуру человека SK-Hep1 приводит к торможению клеточной миграции, а также способствует снижению концентрации MMP-2/9, за счет подавления экспрессии мРНК MT1-MMP [27]. На животных с карциномой легких Льюис показана способность АСК из плодов аронии черноплодной ингибировать развитие метастазов: у животных, получавших растительный комплекс в изолированном режиме, достоверно меньше контрольного уровня оказались масса легких с метастазами и площадь метастатического поражения легких [30].
В механизме противометастатического действия экстрактов из аронии черноплодной имеет значение антиангиогенный эффект антоцианов, который опосредуется несколькими механизмами: угнетением экспрессии фактора роста эндотелия сосудов (VEGF), стимулирующего рост кровеносных сосудов, васкуляризацию опухолей и их метастазирование, и подавлением экспрессии рецепторов VEGF на эндотелиальных клетках через ингибирование активации сигнального пути STAT3 [39, 40]. Антиинвазивное действие, представляющее собой предотвращение деградации коллагена базальной мембраны путем протеолиза, также присуще антоцианам. Известно, что для своей инвазии опухолевые клетки секретируют протеолитические ферменты, вызывающие деградацию внеклеточного матрикса. Причем деградация базальной мембраны зависит не от количества протеолитических ферментов, а от баланса активированных протеаз и их ингибиторов [41]. Матриксные металлопротеиназы и активаторы плазминогена – ферменты, регулирующие деградацию базальной мембраны. Подавление инвазии опухолевых клеток антоцианами осуществляется путем снижения ими экспрессии металлопротеиназ и урокиназного активатора плазминогена, а также стимуляции экспрессии тканевого ингибитора матриксной металлопротеиназы-2 и ингибитора активатора плазминогена [42].
Согласно литературным данным, развитие опухолей различного генеза сопровождается увеличением уровня триглицеридов и холестеринов, что является одним из факторов развития процесса метастазирования [43]. Для антоцианов, выделенных из аронии черноплодной, характерен гиполипидемический эффект [44–46]. Кроме того, во многих исследованиях показано, что использование аронии черноплодной и ее экстрактов приводит к снижению общего холестерина [47, 48], модуляции инсулинового, адипогенного и воспалительного путей [49].
В процессе развития злокачественных новообразований возникают нарушения в прокоагулянтных, антикоагулянтных механизмах и системе фибринолиза, что также приводит к запуску процесса образования метастазов [50]. Выявлено нормализующее влияние плодов аронии на показатели свертываемости крови. Известно, что назначение коммерческого экстракта из аронии черноплодной пациентам со злокачественными новообразованиями приводит к нормализации гемостатических свойств плазмы крови [51–53].
Еще одним перспективным направлением в онкологии является исследование включения аронии черноплодной в схему химиотерапии злокачественных новообразований, с целью создания на ее основе препаратов для повышения эффективности и/или снижения токсического действия цитостатиков.
Опубликованы данные, полученные в результате комплексного изучения химического состава насыщенного антоцианами комплекса из A. melanocarpa, полученного на кафедре фармацевтического анализа ФГБОУ ВО “Сибирский государственный медицинский университет” (г. Томск) и его исследования в онкологическом эксперименте в НИИФиРМ им. Е.Д. Гольдберга (Томский НИМЦ). В составе комплекса, полученного экстракцией 95% подкисленным спиртом этиловым, определено содержание антоцианов (5.83 ± 0.25%), катехинов (0.22 ± 0.02%), дубильных веществ (4.65 ± 0.30%), фенолокислот (0.27 ± 0.01%) и других биологически активных веществ [54].
На животных с перевиваемыми карциномой легких Льюис (3LL), раком легкого-67 (РЛ-67) и меланомой В-16 (В-16) изучено влияние антоциансодержащего комплекса A. melanocárpa (АСК) на эффективность цитостатического лечения. Так, на мышах-самках линии С57ВL/6 с перевитой карциномой легких Льюис показана способность АСК плодов аронии черноплодной повышать антиметастатическое действие циклофосфана: при совместном использовании циклофосфана и АСК аронии достоверно повышался противометастатический эффект цитостатика, судя по уменьшению количества (в 2.0 раза) и площади (в 12.6 раза) метастазов в легких (Р < 0.01), а также достижению максимальных значений индекса ингибирования метастазирования (98%).
У мышей с перевитой меланомой В-16 применение АСК аронии приводило к повышению противометастатического действия цитостатика. Так, в случае совместного использования циклофосфана и АСК аронии достоверно уменьшались количество и площадь метастазов в легочной ткани (в 2.1 раза) относительно этих показателей у животных группы монохимиотерапии [30].
Выявлено также повышение противометастатического действия циклофосфана под действием АСК (судя по уменьшению количества и площади метастазов в легких) у животных c раком легкого-67 [31].
Известно, что у онкологических больных уже активированы процессы перекисного окисления липидов (ПОЛ), еще более возрастающие в процессе цитостатического лечения. Побочные эффекты химиотерапии напрямую связаны с процессами свободнорадикального окисления, наработкой активных форм кислорода (АФК) и реакциями свободнорадикального окисления (СРО), приводящими к оксидативной модификации нуклеиновых кислот, белков и липидов. Так, метаболиты циклофосфана индуцируют ПОЛ, продукты которого нарушают все клеточные процессы, протекающие с потреблением энергии [55]. Нарушение баланса между свободными радикалами и антиоксидантной системой усиливает интоксикацию и приводит к повреждению здоровых органов и тканей, что оказывается лимитирующим фактором при решении вопроса о продолжении лечения [56]. Природные антиоксиданты способны связывать свободные радикалы, отдавая им электроны, препятствуя избыточной их концентрации на мембранах и, таким образом, прекращать процессы разрушения в клетках организма. Антиоксидантные свойства присущи флавоноидам, антоцианам: благодаря фенольной структуре и наличию гидроксильных групп в углеродных кольцах они напрямую связывают активные кислородные радикалы, вступая во взаимодействие с ними и приводя к стабилизации молекул [57–61], тем самым защищая ДНК здоровых клеток от повреждающего воздействия интермедиантов и продуктов перекисного окисления липидов [62]. Также известно, что эти соединения переходят в хиноидную форму, которая сама по себе является субстратом для детоксицирующих ферментов II фазы метаболизма. Это приводит к индукции общего повышения защиты организма от токсических ксенобиотиков [63].
Сведения литературы указывают на способность экстракта аронии черноплодной снижать побочные эффекты доксорубицина посредством уменьшения проявления оксидативного стресса, вызванного цитостатиком [64]. Аналогичные результаты были получены при исследовании влияния коммерческого экстракта из аронии на окислительный стресс у пациенток с метастазирующим раком молочной железы (РМЖ). Показано, что назначение растительного экстракта приводит к повышению активности антиоксидантных ферментов (супероксиддисмутазы, глутатионпероксидазы и глутатионредуктазы) в плазме крови у пациентов с РМЖ как до, так и после операционного вмешательства, а также и на фоне использования цитостатиков [65]. Авторы предполагают, что механизм ингибиции окислительного стресса с помощью экстракта заключается в снижении уровня в плазме крови гомоцистеина, который играет одну из ключевых ролей в процессе перекисного окисления липидов [65, 66]. В работе D. Rugina [66] также показано, что культивирование β-клеток поджелудочной железы совместно с экстрактом аронии черноплодной приводит к увеличению уровня таких антиоксидантных ферментов, как супероксиддисмутаза, каталаза и глутатионпероксидаза по сравнению с клетками, подвергшимися воздействию только прооксидантнов [67].
Анемия встречается у половины онкологических больных, особенно при распространенном процессе, а у пациентов, получающих химиотерапию, ее частота достигает 90% [68]. Вследствие анемии в организме развивается гемическая гипоксия органов и тканей, а снижение содержания кислорода менее 1% стимулирует выработку факторов транскирипции, таких как HIF-1α, NF-kB и АР-1 [69]. Индуцируемые ими изменения активности генома приводят к адаптации клеток к этому состоянию, стимулируют ангиогенез, блокируют апоптоз, способствуя усилению опухолевого роста, инвазии и метастазированию. Низкие концентрации кислорода также оказывают мутагенное действие, усиливают нестабильность генома и, соответственно, вариабельность опухолевых клеток, что является основой для дальнейшей клональной селекции наиболее устойчивых линий. Низкое содержание кислорода в клетке является фактором химиорезистентности опухоли. Гипоксическое состояние способствует агрессивному развитию опухолей и является универсальным фактором неблагоприятного прогноза [70, 71]. В связи с этим, лечение анемии может приводить к повышению оксигенации опухоли и, таким образом, усиливать эффективность противоопухолевой терапии [72].
В наших экспериментах на животных с опухолью обнаружено, что назначение АСК из аронии совместно с доксорубицином приводит к стимуляции процессов восстановления костномозгового кроветворения, в особенности эритроидного ростка. Так, отмечено повышение общей клеточности костного мозга, преимущественно за счет увеличения содержания эритронормобластов. Содержание клеток этой популяции в костном мозге мышей, которым вводили растительный комплекс на фоне химиотерапии, на протяжении всего срока эксперимента оказалось выше такового у животных, получавших только монохимиотерапию.
Состояние костномозгового кроветворения во многом зависит от функциональной активности пула кроветворных клеток-предшественников. Проведенные исследования позволили установить, что при введении АСК из аронии на фоне доксорубицина наблюдалось достоверное увеличение (в 2.0 раза) выхода КОЕ-Э на 10-е сут после инъекции цитостатика, что превышает таковой показатель у животных, получавших референс препарат рекормон совместно с цитостатиком [73 ] .
Антоциансодержащие растения также оказывают положительное влияние на иммунологический статус организма. Так, в работе T. Iwashima et al. [2019] показано, что экстракт плодов аронии подавляет усиленную экспрессию мРНК для IL-1β и IL-6. Более того, под воздействием растительного экстракта наблюдалась ингибиция работы сигнальной молекулы IL-6 – IL6ST (gp130) как на уровне мРНК, так и на уровне белка. Кроме того, было отмечено подавление увеличения экспрессии мРНК CXCL8 (IL-8) и CCL2 (MCP-1), что свидетельствует об иммуномодулирующем действии растительного экстракта [39].
Таким образом, приведенные выше данные убедительно доказывают перспективность создания на основе A. melanocarpa лекарственных средств для дополнительной терапии пациентов со злокачественными новообразованиями. Расширение арсенала средств для индивидуализации схем лечения и рационального выбора терапевтической тактики позволит улучшить качество и продлить жизнь пациентам с онкологической патологией. Кроме того, богатая сырьевая база и низкая стоимость растительного сырья делают такого рода препараты экономически доступными для большинства нуждающихся больных.
Список литературы
Buda V., Andor M., Antal D., Ardelean F., Pavel I.Z., Dehelean C., Soica C., Folescu R., Andrei F., Danciu C. 2021. Cardioprotective Effects of Cultivated Black Chokeberries (Aronia spp.): Traditional Uses, Phytochemistry and Therapeutic Effects. In: Bioactive Compounds in Nutraceutical and Functional Food for Good Human Health. IntechOpen. 23 p. https://doi.org/10.5772/intechopen.92238
Borowska S., Brzóska M.M. 2016. Chokeberries (Aronia melanocarpa) and Their Products as a Possible Means for the Prevention and Treatment of Noncommunicable Diseases and Unfavorable Health Effects Due to Exposure to Xenobiotics. – Compr. Rev. Food Sci. Food Saf. 15(6): 982–1017. https://doi.org/10.1111/1541-4337.12221
Kulling S.E., Rawel H. 2008. Chokeberry (Aronia melanocarpa). – A Review on the Characteristic Components and Potential Health Effects. – Planta Medica. 74(13): 1625–1634. https://doi.org/10.1055/s-0028-1088306
Kokotkiewicz A., Jaremicz Z., Luczkiewicz M. 2010. Aronia Plants: A Review of Traditional Use, Biological Activities, and Perspectives for Modern Medicine. – J. Med. Food. 13(2): 255–269. https://doi.org/10.1089/jmf.2009.0062
Мазнев Н.И. 2006. Лекарственные растения: 15000 наименований лекарственных растений, сборов и рецептов. Описание, свойства, применение, противопоказания. М. 1056 с.
Виноградова Ю.К., Куклина А.Г. 2014. Арония Мичурина: от создания до натурализации. М. 137 с.
Государственный Реестр лекарственных средств. 2013. Т. 1. М.: Минздрав России, Фонд фармацевтической информации.
Государственная Фармакопея российской федерации. 2007. Ч. 1. 12-е изд. М.: Науч. Центр экспертизы средств мед. применения. 704 с.
Jurendic T., Scetar M. 2021. Aronia melanocarpa Products and By-Products for Health and Nutrition: A Review. – Antioxidants (Basel). 10(7): 1052. https://doi.org/10.3390/antiox10071052
Tolić M.-T., Krbavčić I.P., Vujević P., Milinović B., Jurčević I.L., Vahčić N. 2017. Effects of Weather Conditions on Phenolic Content and Antioxidant Capacity in Juice of Chokeberries (Aronia melanocarpa L.). – Pol. J. Food Nutr. Sci. 67(1): 67–74. https://doi.org/10.1515/pjfns-2016-0009
Denev P., Kratchanova M., Petrova I., Klisurova D., Georgiev Y., Ognyanov M., Yanakieva I. 2018. Black Chokeberry (Aronia melanocarpa (Michx.) Elliot) Fruits and Functional Drinks Differ Significantly in Their Chemical Composition and Antioxidant Activity. – J. Chem. Article ID 9574587. https://doi.org/10.1155/2018/9574587
Sidor A., Gramza-Michałowska A. 2019. Black Chokeberry Aronia melanocarpa L. – A Qualitative Composition, Phenolic Profile and Antioxidant Potential. – Molecules. 24(20): 3710. https://doi.org/10.3390/molecules24203710
Sojka M., Kołodziejczyk K., Milala J. 2013. Polyphenolic and basic chemical composition of black chokeberry industrial by-products. – Ind. Crop. Prod. 51: 77–86. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2013.08.051
Pieszka M., Gogol P., Pietras M., Pieszka M. 2015. Valuable Components of Dried Pomaces of Chokeberry, Black Currant, Strawberry, Apple and Carrot as a Source of Natural Antioxidants and Nutraceuticals in the Animal Diet. – Ann. Anim. Sci. 15(2): 475–491. https://doi.org/10.2478/aoas-2014-0072
Yamane T., Kozuka M., Wada-Yoneta M., Sakamoto T., Nakagaki T., Nakano T., Ohkubo I. 2017. Aronia juice suppresses the elevation of postprandial blood glucose levels in adult healthy Japanese. – Clin. Nutr. Exp. 12: 20–26. https://doi.org/10.1016/j.yclnex.2017.01.002
Pavlović A.N., Brcanović J.M., Veljković J.N., Mitić S.S., Tošić S.B., Kalicanin B.M., Kostić D.A., Ðorđević M.S., Velimirović D.S. 2015. Characterization of commercially available products of aronia according to their metal content. – Fruits. 70(6): 385–393. https://doi.org/10.1051/fruits/2015038
Romani A., Vignolini P., Ieri F., Heimler D. 2016. Polyphenols and Volatile Compounds in Commercial Chokeberry (Aronia melanocarpa) Products. – Nat. Prod. Commun. 11(1): 99–102. https://doi.org/10.1177/1934578X1601100129
Jakobek L., Šeruga M., Medvidović-Kosanović M., Novak I. 2007. Antioxidant activity and polyphenols of Aronia in comparison to other berry species. – Agric. Conspec. Sci. 72(4): 301–306.
Oszmiański J., Wojdylo A. 2005. Aronia melanocarpa phenolics and their antioxidant activity. – Eur. Food Res. Technol. 221(6): 809–813. https://doi.org/10.1007/s00217-005-0002-5
Gralec M., Wawer I., Zawada K. 2019. Aronia melanocarpa berries: Phenolics composition and antioxidant properties changes during fruit development and ripening. – Emir. J. Food Agric. 31(3): 214–221. https://doi.org/10.9755/ejfa.2019.v31.i3.1921
Ćujić N., Kardum N., Šavikin K., Zdunić G., Janković T., Menković N. 2018. Potential of Chokeberry (Aronia melanocarpa L.) as a Therapeutic Food. – In: Handbook of Food Bioengieneering. Therapeutic Foods. Vol. 8. Academic Press. P. 209–237. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-811517-6.00007-6
Szopa A., Kokotkiewicz A., Kubica P., Piotr Banaszczak P., Wojtanowska-Krośniak A., Krośniak M., Marzec-Wróblewska U., Badura A., Zagrodzki P., Bucinski A., Luczkiewicz M., Ekiert H. 2017. Comparative analysis of different groups of phenolic compounds in fruit and leaf extracts of Aronia sp.: A. melanocarpa, A. arbutifolia, and A. × prunifolia and their antioxidant activities. – Eur. Food Res. Technol. 243(9): 1645–1657. https://doi.org/10.1007/s00217-017-2872-8
Ochmian I.D., Grajkowski J., Smolik M. 2012. Comparison of Some Morphological Features, Quality and Chemical Content of Four Cultivars of Chokeberry Fruits (Aronia melanocarpa). – Not. Bot. Horti Agrobot. Cluj-Napoca. 40(1): 253–260. https://doi.org/10.15835/nbha4017181
Сорокопудов В.Н., Дейнека В.И., Лукина И.П., Дейнека Л.А. 2005. Антоцианы плодов некоторых видов рода Rubus L. Из коллекции ботанического сада БелГУ. – Химия растительного сырья. 4: 61–65. https://www.elibrary.ru/item.asp?id=9428606
Malik M., Zhao C., Schoene N., Guisti M.M., Moyer M.P., Magnuson B.A. 2003. Anthocyanin-Rich Extract From Aronia meloncarpa L. Induces a Cell Cycle Block in Colon Cancer but Not Normal Colonic Cells. – Nutr. Cancer. 46(2): 186–196. https://doi.org/10.1207/S15327914NC4602_12
Diaconeasa Z., Știrbu I., Xiao J., Leopold N., Ayvaz Z., Danciu C., Ayvaz H., Stănilă A., Nistor M., Socaciu C. 2020. Anthocyanins, Vibrant Color Pigments, and Their Role in Skin Cancer Prevention. – Biomedicines. 8(9): 336. https://doi.org/10.3390/biomedicines8090336
Thi N.D., Hwang E.-S. 2018. Anti-cancer and anti-inflammatory activities of aronia (Aronia melanocarpa) leaves. – Asian Pac. J. Trop. Biomed. 8(12): 586–592. https://doi.org/10.4103/2221-1691.248095
Skupień K., Kostrzewa-Nowak D., Oszmiański J., Tarasiuk J. 2008. In vitro antileukaemic activity of extracts from chokeberry (Aronia melanocarpa (Michx) Elliott) and mulberry (Morus alba L.) leaves against sensitive and multidrug resistant HL60 cells. – Phytother. Res. 22(5): 689–694. https://doi.org/10.1002/ptr.2411
Aiyer H.S., Anni M., Warri A.M., Woode D.R., Hilakivi-Clarke L., Clarke R. 2012. Influence of berry polyphenols on receptor signaling and cell-death pathways: implications for breast cancer prevention. – J. Agric. Food Chem. 60(23): 5693–5708. https://doi.org/10.1021/jf204084f
Андреева В.Ю., Шейкин В.В., Калинкина Г.И., Разина Т.Г., Разина Т.Г., Зуева Е.П., Рыбалкина О.Ю., Ульрих А.В. 2020. Разработка средства на основе плодов аронии черноплодной (Aronia melanocarpa (Michx.) Elliot), повышающего эффективность химиотерапии опухолей. – Химия растительного сырья. 4: 219–226. https://doi.org/10.14258/jcprm.2020046339
Рыбалкина О.Ю., Разина Т.Г., Сафонова Е.А., Киселева Е.А., Ульрих А.В., Андреева В.Ю., Исайкина Н.В., Калинкина Г.И., Зуева Е.П. 2021. Aronia melanocarpa и Sorbus aucuparia (Rosaceae) как перспективные источники получения антоциансодержащих комплексов для дополнительной терапии перевиваемых опухолей. –Растит. ресурсы. 2: 186–192.https://doi.org/10.31857/S0033994621020072
Shih P.H., Yeh C.T., Yen G.C. 2005. Effects of antocyanins on the inhibition of proliferation and induction of apoptosis in human gastric adenocarcinoma cells. – Food Chem. Toxicol. 43(10): 1557–1566. https://doi.org/10.1016/j.fct.2005.05.001
Lazzè M.C., Savio M., Pizzala R., Cazzalini O., Perucca P., Scovassi A.I., Stivala L.A., Bianchi L. 2004. Anthocyanins induce cell cycle perturbations and apoptosis in different human cell lines. – Carcinogenesis. 25(8): 1427–1433. https://doi.org/10.1093/carcin/bgh138
Gill N.K., Rios D., Osorio-Camacena E., Mojica B.E., Kaur B., Soderstrom M.A., Gonzalez M., Plaat B., Poblete C., Kaur N., Singh H., Forester S.C. 2020. Anticancer Effects of Extracts from Three Different Chokeberry Species. – Nutrition and Cancer. 73(7): 1168–1174. https://doi.org/10.1080/01635581.2020.1789679
Dharmawansa K.V.S., Hoskin D.W., Rupasinghe H.P.V. 2020. Chemopreventive Effect of Dietary Anthocyanins against Gastrointestinal Cancers: A Review of Recent Advances and Perspectives. – Int. J. Mol. Sci. 21(18): 6555. https://doi.org/10.3390/ijms21186555
Sharif T., Alhosin M., Auger C., Minker C., Kim J.H., Etienne-Selloum N., Bories P., Gronemeyer H., Lobstein A., Bronner C., Fuhrmann G., Schini-Kerth V.B. 2012. Aronia Melanocarpa Juice Induces a Redox-Sensitive p73-Related Caspase 3-Dependent Apoptosis in Human Leukemia Cells. – PLoS One. 7(3): e32526. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0032526
Webb M.R., Min K., Ebeler S.E. 2008. Anthocyanin interactions with DNA: Interactions, topoisomerase I inhibition and oxidative reactions. – J. Food Biochem. 32(5): 576–596. https://doi.org/10.1111/j.1745-4514.2008.00181.x
Esselen M., Fritz J., Hutter M., Teller N., Baechler S., Boettler U., Marczylo T.H., Gescher A.J., Marko D. 2011. Anthocyanin-rich extracts suppress the DNA-damaging effects of topoisomerase poisons in human colon cancer cells. – Mol. Nutr. Food Res. 55: 143–153. https://doi.org/10.1002/mnfr.201000315
Iwashima T., Kudome Y., Kishimoto Y., Saita E., Tanaka M., Taguchi C., Hirakawa S., Mitani N., Kondo K., Iida K. 2019. Aronia berry extract inhibits TNF-α-induced vascular endothelial inflammation through the regulation of STAT3. – Food Nutr. Res. 63: 3361. https://doi.org/10.29219/fnr.v63.3361
Багхи Д., Сен К.К., Багхи М., Аталай М. 2004. Антиангиогенные, антиоксидантные и антиканцерогенные свойства нового, богатого антоцианином препарата из экстракта ягод. – Биохимия. 69(1): 95–102. https://biochemistrymoscow.com/f/2004/2004-01-0095-avtjgsek.pdf
Wang L.-S., Stoner G. 2008. Antocyanins and their role in cancer prevention. – Cancer Lett. 269(2): 281–290. https://doi.org/10.1016/j.canlet.2008.05.020
Brandstetter H., Grams F., Glitz D., Lang A., Robert Huber R., Wolfram Bode W., Hans-Willi Krell H.-W., Engh R.A. 2001. The 1.8-Å crystal structure of a matrix metalloproteinase 8-barbiturate inhibitor complex reveals a previously unobserved mechanism for collagenase structure recognition. – J. Biol. Chem. 276(20): 17405–17412. https://doi.org/10.1074/jbc.M007475200
Pelton K., Coticchia C.M., Curatolo A.S., Schaffner C.P., Zurakowski D., Solomon K.R., Moses M.A. 2014. Hypercholesterolemia induces angiogenesis and accelerates growth of breast tumors in vivo. – Am. J. Pathol. 184(7): 2099–2110. https://doi.org/10.1016/j.ajpath.2014.03.006
Broncel M., Koziróg-Kołacińska M., Andryskowski G., Duchnowicz P., Koter-Michalak M., Owczarczyk A, Chojnowska-Jezierska J. 2007. Effect of anthocyanins from Aronia melanocarpa on blood pressure, concentration of endothelin-1 and lipids in patients with metabolic syndrome. – Pol. Merkur. Lekarski. 23(134): 116–9. PMID: . (In Polish)18044341
Sikora J., Broncel M., Mikiciuk-Olasik E. 2014. Aronia melanocarpa Elliot reduces the activity of angiotensin I-converting enzyme – in vitro and ex vivo studies. – Oxid. Med. Cell Longev. 2014. Article ID 739721. https://doi.org/10.1155/2014/739721
Broncel M., Kozirog M., Duchnowicz P., Koter-Michalak M., Sikora J., Chojnowska-Jezierska J. 2010. Aronia melanocarpa extract reduces blood pressure, serum endothelin, lipid, and oxidative stress marker levels in patients with metabolic syndrome. – Med. Sci. Monit. 16(1): CR28-34. PMID: .20037491
Kim B., Ku C.S., Pham T.X., Park Y., Martin D.A., Xie L., Taheri R., Lee J., Bolling B.W. 2013. Aronia melanocarpa (chokeberry) polyphenol-rich extract improves antioxidant function and reduces total plasma cholesterol in apolipoprotein E knockout mice. – Nutr. Res. 33(5): 406–413. https://doi.org/10.1016/j.nutres.2013.03.001
Valcheva-Kuzmanova S., Kuzmanov K., Tanchev S., Belcheva A. 2007. Hypoglycemic and hypolipidemic effects of Aronia melanocarpa fruit juice in streptozotocin-induced diabetic rats. – Methods Find. Exp. Clin. Pharmacol. 29: 101–105. https://doi.org/10.1358/mf.2007.29.2.1075349
Qin B., Anderson R.A. 2012. An extract of chokeberry attenuates weight gain and modulates insulin, adipogenic and inflammatory signalling pathways in epididymal adipose tissue of rats fed a fructose-rich diet. – Br. J. Nutr. 108(4): 581–587. https://doi.org/10.1017/S000711451100599X
Danckwardt S., Hentze M.W., Kulozik A.E. 2013. Pathologies at the nexus of blood coagulation and inflammation: thrombin in hemostasis, cancer, and beyond. – J. Mol. Med. (Berl). 91(11): 1257–1271. https://doi.org/10.1007/s00109-013-1074-5
Bijak M., Bobrowski M., Borowiecka M., Podstędek A., Golański J., Nowak P. 2011. Anticoagulant effect of polyphenols-rich extracts from black chokeberry and grape seeds. – Fitoterapia. 82(6): 811–817. https://doi.org/10.1016/j.fitote.2011.04.017
Malinowska J., Babicz K., Olas B., Stochmal A., Oleszek W. 2012. Aronia melanocarpa extract suppresses biotoxicity of homocysteine and its metabolite on hemostatic activity of fibrinogen and plasma. – Nutrition. 28(7–8): 793–798. https://doi.org/10.1016/j.nut.2011.10.012
Sikora J., Broncel M., Markowicz M., Chałubiński M., Wojdan K., Mikiciuk-Olasik E. 2012. Short-term supplementation with Aronia melanocarpa extract improves platelet aggregation, clotting, and fibrinolysis in patients with metabolic syndrome. – Eur. J. Nutr. 51(5): 549–556. https://doi.org/10.1007/s00394-011-0238-8
Андреева В.Ю., Калинкина Г.И., Коломиец Н.Э., Исайкина Н.В. 2013. Методика определения антоцианов в плодах аронии черноплодной. – Фармация. 3: 19–21. https://elibrary.ru/item.asp?id=19124904
Минаева Л.В. 2007. Экспериментальная оценка роли изменений системы глутатиона в реализации побочных цитотоксических эффектов повторного введения циклофосфана. Автореф. дис. … канд. мед. наук. СПб. 20 с.
Павлов В.Н., Рахматуллина И.Р., Фархутдинов Р.Р., Пушкарев В.А., Данилко К.В., Галимова Э.Ф., Баймурзина Ю.Л., Петрова И.В., Мочалов К.С. 2017. Свободнорадикальное окисление и канцерогенез: дискуссионные вопросы. – Креативная хирургия и онкология. 7(2): 54–61. https://doi.org/10.24060/2076-3093-2017-7-2-54-61
Wang S.Y., Jiao H. 2000. Scavenging capacity of berry crops on superoxide radicals, hydrogen peroxide, hydroxyl radicals and singlet oxygen. – J. Agric. Food Chem. 48(11): 5677–5684. https://doi.org/10.1021/jf000766i
Логвинова Е.Е., Брежнева Т.А., Сливкин А.И. 2015. Исследование содержания биологически активных веществ – антиоксидантов в лекарственных формах плодов рябины. – В сб.: М-лы конф. “Современные требования к лекарственному растительному сырью и лекарственным растительным препаратам”. – Москва, Первый МГМУ им. И.М. Сеченова. С. 30–31.
Oszmiański J., Wojdylo A. 2005. Aronia melanocarpa phenolics and their antioxidant activity. – Eur. Food Res. Technol. 221(6): 809–813. https://doi.org/10.1007/s00217-005-0002-5
Heim K.E., Tagliaferro A.R., Bobilya D.J. 2002 Flavonoid antioxidants: chemistry, metabolism and structure-activity relationships. – J. Nutr. Biochem. 13(10): 572–584. https://doi.org/10.1016/S0955-2863(02)00208-5
Kedzierska M., Olas B., Wachowicz B., Stochmal A., Oleszek W., Jeziorski A., Piekarski J., Glowacki R. 2009. An extract from berries of Aronia melanocarpa modulates the generation of superoxide anion radicals in blood platelets from breast cancer patients. – Planta Med. 75(13): 1405–9. https://doi.org/10.1055/s-0029-1185718
Логвинова Е.Е., Брежнева Т.А., Сливкин А.И., Трубенева И.С., Тарабрина В.Н. 2015. Сравнительный анализ мембранстабилизирующего действия препаратов плодов рябины черноплодной. – Вестник ВГУ, серия: химия, биология, фармация. 4: 126–129. http://www.vestnik.vsu.ru/pdf/chembio/2015/04/2015-04-23.pdf
Зверев Я.Ф. 2019. Противоопухолевая активность флавоноидов. – Бюллетень сибирской медицины. 18(2): 181–194. https://doi.org/10.20538/1682-0363-2019-2-181-194
Pavlova V., Sainova I., Alexieva B., Valkova I., Markova Tz., Nikolova E. 2014. Antioxidant effect of Aronia melanocarpa extract after doxorubicin treatment. – Bulgarian J. Agricultural Science. 20 (Supplement 1): 188–192. https://www.agrojournal.org/20/01s-39.pdf
Kędzierska M., Glowacki R., Czernek U., Szydłowska-Pazera K., Potemski P., Piekarski J., Jeziorski A., Olas B. 2013. Changes in plasma thiol levels induced by different phases of treatment in breast cancer; the role of commercial extract from black chokeberry. – Mol. Cell. Biochem. 372: 47–55. https://doi.org/10.1007/s11010-012-1444-2
Skoczyńska A., Jędrychowska I., Poręba R., Affelska-Jercha A., Turczyn B., Wojakowska A., Andrzejak R. 2007. Influence of chokeberry juice on arteria blood pressure and lipid parameters in men with mild hypercholesterolemia. – Pharmacol. Rep. 59(Suppl. 1): 177–180. http://if-pan.krakow.pl/pjp/pdf/2007/s1_177.pdf
Rugina D., Diaconeasa Z., Coman C., Bunea A., Socaciu C., Pintea A. 2015. Chokeberry Anthocyanin Extract as Pancreatic β-Cell Protectors in Two Models of Induced Oxidative Stress. – Oxidative medicine and cellular longevity. Article ID 429075 https://doi.org/10.1155/2015/429075
Spivak J.L., Gascón P., Ludwig H. 2009. Anemia management in oncology and hematology. – The Oncologist. 14(S1): 43–56. https://doi.org/10.1634/theoncologist.2009-S1-43
Vaupel P. 2008. Hypoxia and aggressive tumor phenotype: implications for therapy and prognosis. – The Oncologist 13(S3): 21–26. https://doi.org/10.1634/theoncologist.13-S3-21
Caro J.J., Salas M., Ward A., Goss G. 2001. Anemia as an independent prognostic factor for survival in patients with cancer: a systemic, quantitative review. – Cancer. 91(12): 2214–2221. https://doi.org/10.1002/1097-0142(20010615)91:12<2214::AID-CNCR1251>3.0.CO;2-P
Bottaro D.P., Liotta, L.A. 2003. Cancer: out of air is notout of action. – Nature. 423(6940): 593–595. https://doi.org/10.1038/423593a
Новик А.В. 2009. Анемия и метаболические расстройства у онкологических больных. – Практическая онкология. 10(3): 131–140. https://practical-oncology.ru/articles/228.pdf
Кириленко К.М., Рыбалкина О.Ю. 2018. Влияние экстракта плодов аронии черноплодной (Aronia melanocarpa (Michx.) Elliot) на эритроидный росток кроветворения в условиях цитостатического воздействия. – В сб.: Перспективы развития фундаментальных наук: сб. науч. тр. XV Междунар. конф. студентов, аспирантов и молодых ученых, Томск: Издательский Дом Томского гос. ун-та, Биология и фундаментальная медицина. 4: 78–80. https://conf-prfn.org/Arch/Proceedings_2018_vol_4.pdf
Дополнительные материалы отсутствуют.
Инструменты
Растительные ресурсы


