Океанология, 2023, T. 63, № 3, стр. 426-435

Верификация суточной периодичности закладки микроприростов на отолитах молоди глазчатого опистоцентра Opisthocentrus ocellatus (Stichaeidae) для ретроспективной оценки периода массового вылупления его личинок в условиях залива Петра Великого Японского моря

В. А. Шелехов *

Национальный научный центр морской биологии им. А.В. Жирмунского Дальневосточного отделения РАН
Владивосток, Россия

* E-mail: shelekhov@mail.ru

Поступила в редакцию 20.10.2022
После доработки 01.12.2022
Принята к публикации 16.12.2022

Аннотация

Проведены эксперименты по прижизненному мечению отолитов осевшей молоди глазчатого опистоцентра Opisthocentrus ocellatus (Stichaeidae) ализариновым красным. Подсчет микроприростов в зоне между двумя последовательными мечениями с интервалом в 9 суток подтвердил суточную периодичность их закладки на данном этапе развития глазчатого опистоцентра. Это позволило определить период вылупления в естественных условиях молоди, осевшей в б. Житкова зал. Петра Великого в 2017 г.: с последней декады марта до конца второй декады апреля с пиком в первой декаде апреля. Вылупление начинается еще подо льдом, но массово оно идет уже при температуре 1–3°С, после выноса льда из бухты. С учетом известных сроков нереста, мы можем утверждать, что развитие икры O. ocellatus в данном районе при отрицательных температурах воды в декабре-марте может идти в течение 4–5 месяцев, что почти в 3 раза превышает время развития в более мягких условиях юга о. Хоккайдо.

Ключевые слова: глазчатый опистоцентр, мечение, ализариновый красный, сроки инкубации и вылупления, отолиты, зал. Петра Великого, Японское море

Список литературы

  1. Баланов А.А., Епур И.В., Шелехов В.А. Описание пелагических личинок Chirolophis japonicus и Ch. saitone (Stichaeidae) из вод залива Петра Великого (Японское море) // Вопросы ихтиологии. 2020. Т. 60. № 3. С. 271–281.

  2. Гнюбкина В.П., Маркевич А.И. Размножение и развитие расписного маслюка Pholis picta (Perciformes: Pholidae) и опоясанного опистоцентра Opisthocentrus zonope (Stichaeidae) // Вопр. ихтиологии. 2008. Т. 48. № 4. С. 528–536.

  3. Линдберг Г.У., Красюкова З.В. Рыбы Японского моря и сопредельных частей Охотского и Желтого морей. Ч. 4. Teleostomi. XXIX. Perciformes. 3. Blennioidei – 13. Gobioidei (CXLV. Сем. Anarhichadidae – CLXXV. Сем. Periophthalmidae). Л.: Наука, 1975. 464 с.

  4. Макеева А.П. Эмбриология рыб. М.: Изд-во МГУ, 1992. 216 с.

  5. Медников Б.М. Температура как фактор развития // Внешняя среда и развивающийся организм. М.: Наука, 1977. С. 7–52.

  6. Надточий В.В. Сезонное развитие планктона в зонах разных типов вертикальной структуры вод северо-западной части Японского моря // Изв. ТИНРО. 1998. Т. 123. С. 150–167.

  7. Павлов Д.А. Морфологическая изменчивость в раннем онтогенезе костистых рыб. М.: ГЕОС, 2007. 267 с.

  8. Рутенко О.А. Эколого-морфологический и генетический анализ опистоцентровых рыб Японского моря (Perciformes: Opisthocentridae), Автореферат диссертации. Владивосток. 2022. 24 с. Так же доступно как [электронный ресурс] http://wwwimb. dvo.ru/misc/dissertations/images/dissertations/files/ rutenko/Autoreferat_Rutenko.pdf (дата обращения: 12.12.2022).

  9. Соколовский А.С., Соколовская Т.Г. Атлас икры, личинок и мальков рыб Российский вод Японского моря. Владивосток: Дальнаука, 2008. 223 с.

  10. Шунтов В.П. Биология дальневосточных морей России. Т. 1. Владивосток: ТИНРО-центр, 2001. 580 с.

  11. Beckman D.W., Schulz R.G. A simple method for marking fish otoliths with alizarin compounds.// Trans. Am. Fish. Soc. 1996. V. 125. P. 146–149. https://doi.org/10.1577/1548-8659(1996)125%3C0146: ASMFMF%3E2.3.CO;2

  12. Blom G., Nordeide J.T., Sv$\mathop a\limits^{\prime ^\circ } $sand T., Borge A. Application of two fluorescent chemicals, alizarin complexone and alizarin red S, to mark otoliths of Atlantic cod, Gadus morhua L. // Aquaculture and Fisheries Management. 1994. V. 25. P. 229–243.

  13. Downing G., Litvak M.K. Effects of light intensity, spectral composition and photoperiod on development and hatching of haddock (Melanogrammus aeglefinus) embryos // Aquaculture. 2002. V. 213. P. 265–278. PII: S0044-8486(02)00090-X.

  14. Geffen A.J. The deposition of otolith rings in Atlantic salmon, Salmo salar L., embryos // J. Fish Biol. 1983. V. 23. P. 467–474.

  15. Joh M., Joh T., Matsu-ura T., Takatsu T. Validation of otolith increment formation and the growth rate of fat greenling larvae // Aquacult. Sci. 2008. V. 56. P. 157–166. https://doi.org/10.11233/aquaculturesci.56.157

  16. Katakura S., Ohta M., Jin M., Sakur Y. Otolith-marking experiments of juvenile walleye pollock Theragra chalcogyamma using oxytetracycline, alizarin complexone, and alizarin red // Suisanzoshoku. 2003. V. 51. № 3. P. 327–335. https://doi.org/10.11233/AQUACULTURESCI 1953.51.327

  17. Korwin-Kossakowski M. Fish hatching strategies: a review // Reviews in Fish Biology and Fisheries. 2012. V. 22. P. 225–240. https://doi.org/10.1007/s11160-011-9233-7

  18. Lagardere F., Thibaudeau K., Begout Anras M.L. Feasibility of otolith markings in large juvenile turot, Scophthalmus maximus, using immersion in alizarin-red S solutions // ICES J. Mar. Sci. 2000. V. 57. P. 1175–1181. https://doi.org/10.1006/jmsc.2000.0804

  19. Morales-Nin B. Review of the growth regulation processes of otolith daily increment formation // Fish. Res. 2000. V. 46. P. 53–67. https://doi.org/10.1016/S0165-7836(00)00133-8

  20. Nakaya M., Morioka T., Fukunaga K. et al. Validation of otolith daily increments for larval and juvenile Japanese halfbeak Hyporhamphus sajori // Fish. Res. 2008. V. 93. P. 186–189. https://doi.org/10.1016/j.fishres.2008.04.004

  21. Ochiai T., Fuji A. Energy transformations by a blenny (Opisthocentrus ocellatus) population of Usu bay, southern Hokkaido // Bulletin of the Faculty of Fisheries Hokkaido University. 1980. V. 31. № 4. P. 314–326.

  22. Panchenko V.V., Shelekhov V.A. New data on reproduction and early ontogenesis of the аntlered sculpin, Enophrys diceraus (Cottidae) in Peter the Great Bay // Marine Biology in the 21st Century: Achievements and Development Outlook (in Commemoration of the 100th Anniversary of the Birth of Academician Alexey V. Zhirmunsky). ABSTRACTS of the International Conference. Vladivostok, 2021. P. 182–183. Так же доступно как [электронный ресурс] http://www.imb.dvo.ru/images/nscmb/files/meetings/ AVZ-Conf-2021-Posters/Panchenko_VV_poster.pdf (дата обращения: 08.12.2022).

  23. Pavlov D.A., Novikov G.G. Life history and peculiarities of common wolffish (Anarhichas lupus) in the White Sea // ICES Journal of Marine Science. 1993. V. 50. № 3. P. 271–277.

  24. Pavlov D.A. Growth of juveniles of White Sea common wolffish, Anarhichas lupus L., in captivity // Aquacult. Res. 1995. V. 26. P. 195–203.

  25. Rě P. Daily growth increments in the sagitta of pilchard larvae Sardina pilchardus (Walbaum, 1792) (Pisces: Clupeidae) // Cybium. 1984. V. 7. № 3. P. 9–15.

  26. Shelekhov V.A., Epur I.V., Balanov A.A. et al. Some adaptations of pricklebacks (family Stichaeidae) to reproduction in Peter the Great Bay (the Sea of Japan). // Marine Biology in the 21st Century: Achievements and Development Outlook (in Commemoration of the 100th Anniversary of the Birth of Academician Alexey V. Zhirmunsky). ABSTRACTS of the International Conference. Vladivostok, 2021. P. 182–183. Так же доступно как [электронный ресурс] http://www.imb.dvo.ru/images/nscmb/files/meetings/ AVZ-Conf-2021-Posters/Shelekhov_VA_poster.pdf (дата обращения: 08.12.2022).

  27. Shiogaki M. Life history of the stichaeid fish Opisthocentrus ocellatus.// Jap. J. Ichthyol. 1982. V. 29. № 1. P. 77–85.

  28. Tokuya K., Amaoka K. Studies on larval and juvenile Blennies in the coastal waters of the Southern Hokkaido (Pisces: Blennioidei) // Bull. Fac. Fish. Hok. Univ. 1980. V. 31. № 1. P. 16–49.

  29. Tsukamoto K., Shima Y. Otolith daily increment in sand fish // Nippon Suisan Gakkaishi. 1990. V. 56. P. 1083–1087.

Дополнительные материалы отсутствуют.