Молекулярная биология, 2023, T. 57, № 4, стр. 726-735
Пространственная реконструкция TRPC-механорецепторов гребневика Mnemiopsis leidyi A. Agassiz, 1865
А. В. Кузнецов a, b, Д. Н. Втюрина c, *
a Федеральный исследовательский центр Институт биологии южных морей им. А.О. Ковалевского
Российской академии наук
299011 Севастополь, Россия
b Севастопольский государственный университет
299053 Севастополь, Россия
c Федеральный исследовательский центр химической физики им. Н.Н. Семенова Российской академии наук
119991 Москва, Россия
* E-mail: vtyurinad@gmail.com
Поступила в редакцию 03.09.2022
После доработки 06.11.2022
Принята к публикации 22.11.2022
- EDN: QLQZZG
- DOI: 10.31857/S0026898423040122
Полные тексты статей выпуска доступны в ознакомительном режиме только авторизованным пользователям.
Аннотация
Гребневик (Ctenophora) Mnemiopsis leidyi A. Agassiz, 1865 отвечает на слабое механическое раздражение интенсивной люминесценцией, однако механизм этого явления не известен. Нами проведен поиск возможных тактильных рецепторов, которые инициируют сигнальную трансдукцию, заканчивающуюся люминесценцией фотобелков. В геноме M. leidyi найдены три гена ортолога TRPC-белков мыши (5z96) и дрозофилы (5vkq) – ML234550a-PA (860 аа), ML03701a-PA (828 аа) и ML038011a-PA (1395 аа). Последний белок содержит длинную анкириновую спираль, состоящую из 16 ANK-доменов. Изучение аннотированных доменов и сети взаимодействий между белками интерактома позволяет предположить, что белки ML234550a-PA и ML03701a-PA осуществляют цитоплазматическую, а ML038011a-PA – внутриядерную трансдукцию механических сигналов. Пространственная реконструкция выявила различия в структуре этих белков, что может быть связано с их разными функциями в клетке. Обсуждается, какой из этих белков участвует в инициации люминесценции после механического раздражения.
Полные тексты статей выпуска доступны в ознакомительном режиме только авторизованным пользователям.
Список литературы
Himmel N.J., Cox D.N. (2020) Transient receptor potential channels: current perspectives on evolution, structure, function and nomenclature. Proc. Biol. Sci. 287(1933), 20201309. https://doi.org/10.1098/rspb.2020.1309
Cao E. (2020) Structural mechanisms of transient receptor potential ion channels. J. Gen. Physiol. 152(3), e201811998. https://doi.org/10.1085/jgp.201811998
Samanta A., Hughes T.E., Moiseenkova-Bell V.Y. (2018) Transient receptor potential (TRP) channels. Subcell. Biochem. 87, 141‒165. https://doi.org/10.1007/978-981-10-7757-9_6
Nilius B., Owsianik G. (2011) The transient receptor potential family of ion channels. Genome Biol. 12(3), 218. https://doi.org/10.1186/gb-2011-12-3-218
Lehnert B.P., Santiago C., Huey E.L., Emanuel A.J., Renauld S., Africawala N., Alkislar I., Zheng Y., Bai L., Koutsioumpa C., Hong J.T., Magee A.R., Harvey C.D., Ginty D.D. (2021) Mechanoreceptor synapses in the brainstem shape the central representation of touch. Cell. 184(22), 5608‒5621. https://doi.org/10.1016/j.cell.2021.09.023
Robinson C.V., Rohacs T., Hansen S.B. (2019) Tools for understanding nanoscale lipid regulation of ion channels. Trends Biochem. Sci. 44(9), 795‒806. https://doi.org/10.1016/j.tibs.2019.04.00
Liang X., Sun L., Liu Z. (2017) Mechanosensory transduction in Drosophila melanogaster. Singapore: Springer, pp. 82. https://doi.org/10.1007/978-981-10-6526-2
Ryan J.F., Pang K., Schnitzler C.E., Nguyen A.D., Moreland R.T., Simmons D.K., Koch B.J., Francis W.R., Havlak P., NISC Comparative Sequencing Program; Smith S.A., Putnam N.H., Haddock S.H., Dunn C.W., Wolfsberg T.G., Mullikin J.C., Martindale M.Q., Baxevanis A.D. (2013) The genome of the ctenophore Mnemiopsis leidyi and its implications for cell type evolution. Science. 342(6164), 1242592. https://doi.org/10.1126/science.1242592
Moroz L.L. (2015) Convergent evolution of neural systems in ctenophores. J. Exp. Biol. 218(4), 598‒611. https://doi.org/10.1242/jeb.110692
Moroz L.L., Kohn A.B. (2016) Independent origins of neurons and synapses: insights from ctenophores. Philos. Trans. R. Soc. B. 371(1685), 20150041. https://doi.org/10.1098/rstb.2015.0041.
Moroz L.L. (2021) Multiple origins of neurons from secretory cells. Front. Cell Dev. Biol. 9, 669087. https://doi.org/10.3389/fcell.2021.669087
Aronova M.Z. (2009) Structural models of “simple” sense organs by the example of the first Metazoa. J. Evol. Biochem. Phys. 45(2), 179‒196. https://doi.org/10.1134/S0022093009020017
Jékely G., Godfrey-Smith P., Keijzer F. (2021) Reafference and the origin of the self in early nervous system evolution. Philos. Trans. R. Soc. B. 376(1821), 20190764. https://doi.org/10.1098/rstb.2019.0764
Bagriantsev S.N., Gracheva E.O., Gallagher P.G. (2014) Piezo proteins: regulators of mechanosensation and other cellular processes. J. Biol. Chem. 289(46), 31673‒31681. https://doi.org/10.1074/jbc.R114.612697
Madeira F., Park Y.M., Lee J., Buso N., Gur T., Madhusoodanan N., Basutkar P., Tivey A.R.N., Potter S.C., Finn R.D., Lopez R. (2019) The EMBL-EBI search and sequence analysis tools APIs in 2019. Nucl. Acids Res. 2(47), W636‒W641. https://doi.org/10.1093/nar/gkz268
Chevenet F., Brun C., Bañuls A.L., Jacq B., Christen R. (2006) TreeDyn: towards dynamic graphics and annotations for analyses of trees. BMC Bioinformatics. 10(7), 439. https://doi.org/10.1186/1471-2105-7-439
Kyte J., Doolittle R.F. (1982) A simple method for displaying the hydropathic character of a protein. J. Mol. Biol. 157(1), 105‒132. https://doi.org/10.1016/0022-2836(82)90515-0
Mistry J., Chuguransky S., Williams L., Qureshi M., Salazar G.A., Sonnhammer E.L., Tosatto S.C.E., Paladin L., Raj S., Richardson L.J., Finn R.D., Bateman A. (2021) Pfam: The protein families database in 2021. Nucl. Acids Res. 49(D1), D412‒D419. https://doi.org/10.1093/nar/gkaa913
Szklarczyk D., Gable A.L., Nastou K.C., Lyon D., Kirsch R., Pyysalo S., Doncheva N.T., Legeay M., Fang T., Bork P., Jensen L.J., von Mering C. (2021) The STRING database in 2021: customizable protein–protein networks, and functional characterization of user-uploaded gene/measurement sets. Nucl. Acids Res. 49(D1), D605‒D612. https://doi.org/10.1093/nar/gkaa1074
Kelley L.A., Mezulis S., Yates C.M., Wass M.N., Sternberg M.J. (2015) The Phyre2 web portal for protein modeling, prediction and analysis. Nat. Protoc. 10(6), 845‒858. https://doi.org/10.1038/nprot.2015.053
Sayle R.A., Milner-White E.J. (1995) RASMOL: biomolecular graphics for all. Trends Biochem. Sci. 20(9), 374‒376. https://doi.org/10.1016/S0968-0004(00)89080-5
Pettersen E.F., Goddard T.D., Huang C.C., Couch G.S., Greenblatt D.M., Meng E.C., Ferrin T.E. (2004) UCSF Chimera – a visualization system for exploratory research and analysis. J. Comput. Chem. 25(13), 1605‒1612. https://doi.org/10.1002/jcc.20084
Jin P., Bulkley D., Guo Y., Zhang W., Guo Z., Huynh W., Wu S., Meltzer S., Cheng T., Jan L.Y., Jan Y.N., Cheng Y. (2017) Electron cryo-microscopy structure of the mechanotransduction channel NOMPC. Nature. 547(7661), 118‒122. https://doi.org/10.1038/nature22981
Duan J., Li J., Zeng B., Chen G.L., Peng X., Zhang Y., Wang J., Clapham D.E., Li Z., Zhang J. (2018) Structure of the mouse TRPC4 ion channel. Nat. Commun. 9(1), 1‒10. https://doi.org/10.1038/s41467-018-05247-9
Ray A., Lindahl E., Wallner B. (2012) Improved model quality assessment using ProQ2. BMC Bioinform. 13(1), 1‒12. https://doi.org/10.1186/1471-2105-13-224
Russell S., Norvigb P. (2010) Intelligence Artificielle: Avec Plus de 500 Exercices. Pearson Education, France.
Ward J.J., McGuffin L.J., Bryson K., Buxton B.F., Jones D.T. (2004) The DISOPRED server for the prediction of protein disorder. Bioinformatics. 20(13), 2138‒2139. https://doi.org/10.1093/bioinformatics/bth195
Jones D.T., Cozzetto D. (2015) DISOPRED3: precise disordered region predictions with annotated protein-binding activity. Bioinformatics. 31(6), 857‒863. https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btu744
Perissinotti P.P., Martínez-Hernández E., Piedras-Rentería E.S. (2021) TRPC1/5-Cav3 complex mediates leptin-induced excitability in hypothalamic neurons. Front. Neurosci. 15, 679078. https://doi.org/10.3389/fnins.2021.679078
Watson R.A. (2006) Compositional Evolution: The Impact of Sex, Symbiosis, and Modularity on the Gradualist Frame-work of Evolution. Vienna Series in Theoretical Biology: A Bradford Book. 344 p. ISBN-10: 9780262232432
Oteiza P., Baldwin M.W. (2021) Evolution of sensory systems. Curr. Opin. Neurobiol. 71, 52‒59. https://doi.org/10.1016/j.conb.2021.08.005
Li H. (2017) TRP channel classification. Adv. Exp. Med. Biol. 976, 1‒8. https://doi.org/10.1007/978-94-024-1088-4_1
Hellmich U.A., Gaudet R. (2014) Structural biology of TRP channels. Handb. Exp. Pharmacol. 223, 963‒990. https://doi.org/10.1007/978-3-319-05161-1_10
Venkatachalam K., Montell C. (2007) TRP channels. Annu. Rev. Biochem. 76, 387‒417. https://doi.org/10.1146/annurev.biochem.75.103004.142819
Voets T. (2012) Quantifying and modeling the temperature-dependent gating of TRP channels. Rev. Physiol. Biochem. Pharmacol. 162, 91‒119. https://doi.org/10.1007/112_2011_5
Coste B., Mathur J., Schmidt M., Earley T.J., Ranade S., Petrus M.J., Dubin A.E., Patapoutian A. (2010) Piezo1 and Piezo2 are essential components of distinct mechanically activated cation channels. Science. 330(6000), 55‒60. https://doi.org/10.1126/science.1193270
Peng G., Shi X., Kadowaki T. (2015) Evolution of TRP channels inferred by their classification in diverse animal species. Mol. Phylogenet. Evol. 84, 145‒157. https://doi.org/10.1016/j.ympev.2014.06.016
Voets T., Nilius B. (2003) TRPs make sense. J. Membr. Biol. 192(1), 1‒8. https://doi.org/10.1007/s00232-002-1059-8
Voets T., Talavera K., Owsianik G., Nilius B. (2005) Sensing with TRP channels, Nat. Chem. Biol. 1(2), 85‒92. https://doi.org/10.1038/nchembio0705-85
Kadowaki T. (2015) Evolutionary dynamics of metazoan TRP channels. Pflugers Arch. 467(10), 2043‒2053. https://doi.org/10.1007/s00424-015-1705-5
Дополнительные материалы
- скачать ESM.zip
- Приложение 1. Рис. S1. - Рис. S4.
Инструменты
Молекулярная биология