Доклады Российской академии наук. Науки о жизни. T. 513, Номер 1, 2023

Доклады Российской академии наук. Науки о жизни, 2023, T. 513, № 1, стр. 595-598

Белки CBP и RAD21 связываются на границах форум-доменов в хромосомах человека

Н. А. Чуриков 1*, И. Р. Алембеков 1, Е. С. Клушевская 1, П. Б. Мейлах 1, А. Н. Кретова 1, О. Д. Манагарова 1, Г. И. Кравацкая 1, Ю. В. Кравацкий 1

1 Институт молекулярной биологии имени В. А. Энгельгардта Российской академии наук
Москва, Россия

* E-mail: tchurikov@eimb.ru

Поступила в редакцию 29.08.2023
После доработки 05.09.2023
Принята к публикации 05.09.2023

Полный текст (PDF)

Аннотация

Форум-домены – это фрагменты ДНК длиной около 100 kb, ограниченные горячими точками двухцепочечных разрывов ДНК (ДЦР). Они содержат координированно экспрессирующиеся гены. Механизмы, обеспечивающие такую экспрессию, неизвестны. Предполагается, что на границах форум-доменов могут специфически связываться белки, вовлеченные в эпигенетическую регуляцию генов, расположенных в доменах. В настоящей работе мы использовали данные о локализации горячих точек ДЦР и местах связывания десяти ядерных белков в клетках HEK293T для того, чтобы выяснить – есть ли среди них белки, которые связываются именно на границах доменов. Оказалось, что два белка – CBP и RAD24, вовлеченные в эпигенетическую регуляцию экспрессии генов и образование 3D структур хромосом, связываются на границах форум-доменов. Мы предполагаем, что эти белки могут обеспечивать координированную экспрессию генов в доменах.

Ключевые слова: форум-домены, двухцепочечные разрывы ДНК (ДЦР), эпигенетика, CBP, RAD21

Форум-домены – это области хромосом эукариот длиной около 100 kb, расположенные между горячими точками двухцепочечных разрывов ДНК (ДЦР) в хромосомах эукариот [13]. Эти домены содержат координированно экспрессирующиеся гены [3]. Природа такой экспрессии пока не понятна. Однако известно, что на границах этих доменов связываются белки PARP1 и HNRNPA2B1 [3]. Известно, что PARP1, наряду с участием в репарации ДНК, является регулятором структур хромосом и транскрипции, а HNRNPA2B1 участвует в сплайсинге пре-мРНК и может функционировать вместе PARP1 [3]. Двухцепочечные разрывы ДНК являются наиболее частыми и опасными для клетки повреждений хромосом эукариот [4]. Эти разрывы с неизбежностью появляются in vivo как при эндогенных физиологических процессах (транскрипция, репликация, транспозиции, рекомбинации), так и в результате ряда экзогенных химических или физических воздействий [57]. Стабильность генома обеспечивают мощные механизмы репарации ДНК, которые полностью залечивают все разрывы, иначе бы происходила гибель клетки [8]. Обнаружено, что двухцепочечные разрывы ДНК чаще всего происходят в активно работающих генах, контролирующих дифференцировку, развитие и морфогенез [3]. Предполагается, что это связано с активной транскрипцией, при которой образуются так называемые Р-петли (R-loops), области расплетенной ДНК, в которых синтезируется РНК.

Для того, чтобы выяснить, какие еще белки связываются с концевыми областями форум-доменов, и как это может быть связано с координированной экспрессией генов, мы использовали полногеномные данные картирования горячих точек ДЦР и доступные данные ChIP-Seq для десяти белков в линии клеток HEK293T. В результате впервые обнаружено, что места горячих точек ДЦР, которые ограничивают эти домены, значительно обогащены местами связывания ко-активатора транскрипции CBP и белка RAD21, вовлеченного в репарацию ДНК. Эти данные могут объяснять координированную экспрессию генов в доменах, а также свидетельствуют об активной репарации ДНК в областях горячих точек ДЦР.

Полногеномные данные о сайтах ДЦР в клетках HEK293T c точностью до 1 bp были взяты из ранее полученной нами базы данных GSE201829. Чтения двух реплик из базы данных выравнивали на секвенированный геном человека (версия GRCh37/hg19 p.13). Соответствие данных картирования ДЦР в репликах было достаточно высоким (Pearson = 0.88, Spearman = 0.93). Для анализа были выбраны наиболее частые разрывы в ДНК (горячие точки ДЦР), которые ограничивают домены ДНК длиной 100 kb и более.

Результаты экспериментов ChIP-Seq для белков CBP, RAD21, TAF15, FUS, ELK4, HDGF, TRIM28, FOXM1, TCF7L2, LEF1и для сайтов, доступных для DNase I, взяты из базы данных ENCODE (accession numbers: GSM1239075, GSM1081542, GSM1895987, GSM1895985, ENCFF658HSX, ENCFF347GJE, ENCFF340FXG, ENCFF784PBW, ENCFF851WEQ, ENCFF112HIM и ENCFF716SFD соответственно).

Профили связывания указанных белков и сайтов DNase I вокруг горячих точек ДЦР (±1.5 kb) получали интерактивно с помощью программы S-eqPlots [9]. При этом использовали 10-bp шаг профилирования и нормализацию по z-критерию.

На рис. 1 представлены полногеномные профили мест связывания некоторых белков и сайтов DNase I на границах форум-доменов.

Рис. 1.

Профили связывания белков и сайтов DNase I на границах форум-доменов в линии клеток HEK293T. По оси X указаны расстояния от центра горячих точек ДЦР (±1.5 kb). По оси Y указаны значения z-критерия (± 4). Размытость на кривых указывает на разбросы данных при полногеномном анализе.

Оказалось, что CBP связывается с горячими точками ДЦР. Ранее было обнаружено, что конкретные сайты разрывов в горячих точках рассеяны во фрагментах ДНК длиной 20–100 bp. Узкий пик профиля связывания CBP указывает на примерное соответствие размерам горячих точек ДЦР. Этот белок постоянно экспрессируется и является ацетилтрансферазой, которая ацетилирует гистон H3 по лизину 27 (H3K27ac) на энхансерах и промоторах [10]. Похожий профиль связывания обнаружил и белок RAD21. Он входит в кохезиновый комплекс наряду с белками SMC1a, SMC3, SCC3 и STAG2 [11]. Комплекс вовлечен в репарацию ДЦР, а также выполняет ряд других функций в ядре. Связывание RAD21 было ожидаемым, поскольку горячие точки ДЦР должны репарироваться. Ранее было обнаружено связывание белков UBF, CTCF, TCF7L2, KAP1, PARP1 и H2AX в девяти горячих точках ДЦР в генах рРНК (Плеяды), которые являются самыми хрупкими сайтами в хромосомах человека [6]. Последние три белка также ассоциированы с репараций ДЦР.

Мы не обнаружили связывание двух других анализируемых белков – TAF15 и FUS – на границах форум-доменов (рис. 1). TAF15 (TATA-Box Binding Protein Associated Factor 15) входит в общий фактор транскрипции TFIID [12], а FUS участвует в сплайсинге пре-мРНК и экспорте зрелых мРНК в цитоплазму [13]. Профили этих белков служат отрицательными контролями в данной работе. Другие белки (ELK4, HDGF, TRIM28, FOXM1, TCF7L2, LEF1) также не обнаружили связывания на границах доменов (не показано). Они были выбраны, поскольку все они являются факторами транскрипции и, как мы предполагали, могут участвовать в регуляции экспрессии в форум-доменах, связываясь на их границах.

Ранее было описано, что горячие точки ДЦР образуются in vivo с помощью эндогенных ферментов, тогда как DNase I чувствительные сайты выявляются   in vitro   с   помощью   экзогенной ДНКазы [3]. Этот вывод независимо подтверждается профилем сайтов, чувствительных к ДНКазе, указанном на рис. 1. Природа горячих точек ДЦР иная, эти точки, как видно, не доступны экзогенному ферменту и, следовательно, расположены в закрытом хроматине.

Данные о профилях не отражают возможной сложности распределения мест связывания CBP, RAD21 и их взаимоотношений с горячими точками ДЦР в хромосомах. Для выяснения этих взаимоотношений мы изучили характер их распределения вдоль хромосом, используя геномный браузер. На рис. 2 приведены две области генома. Одна – 1-Mb область хромосомы 4, другая – 800-kb фрагмент chr10. Видно, что почти всегда пикам ДЦР соответствуют области связывания CBP и RAD21. Иногда на один пик ДЦР приходится целая область мест связывания CBP (область 42.8 Mb во фрагменте chr10). Ранее было показано, что менее частые ДЦР находятся и внутри больших доменов [3]. В целом распределение разрывов в ДНК и мест связывания этих двух белков соответствует данным профилирования (рис. 1).

Рис. 2.

Характер перекрывания областей связывания CBP, RAD21 и горячих точек ДЦР в линии клеток HEK293T человека. (а) область хромосомы 4. (б) область хромосомы 10. Координаты указаны для версии генома человека hg19. Области связывания CBP показаны бирюзовым, RAD21 – красным, а горячие точки ДЦР – синим цветом.

Почему нет однозначного соответствия между местами разрывов в ДНК и сайтами связывания RAD21? Мы предполагаем, что это связано с тем, что данный белок вовлечен не только в репарацию ДНК. Известно, что в составе кохезинового комплекса RAD21 играет важную роль в формировании петель хроматина и в организации 3D структур хромосом [14]. Мы предполагаем, что места связывания RAD21 вне горячих точек ДЦР (рис. 2) указывают на области, в которых когезиновый комплекс образует петли хроматина внутри форум-доменов.

Наши данные указывают на то, что белки CBP и RAD21, выполняя разные функции, вместе участвуют в организации координированной экспрессии в форум-доменах. В процессе формирования петель хроматина CBP может вносить активную метку хроматина H3K27ac. Это может обеспечивать координированную активацию экспрессии в форум-доменах. Ранее было выяснено, что около 80% форум-доменов подвергается сайленсингу во всех хромосомах человека [3]. Возможно, что и координированный сайленсинг генов в форум-доменах может проходить сходным образом. Только неактивные метки в гистоны может вносить другой фермент(ы), например, метку H3K27me3, входящие в комплекс PCR2. Это предположение подкрепляется тем, что данная эпигенетическая метка связана с репарацией ДЦР в ДНК с помощью гомологичной рекомбинации [15]. В настоящее время мы проверяем эти предположения экспериментально.

Список литературы

  1. Tchurikov N.A., Kretova O.V., Sosin D.V., Zykov I.A., Zhimulev I.F., Kravatsky Y.V. // Genome-wide profiling of forum domains in Drosophila melanogaster. Nucleic Acids Res. 2011, 39, 3667–3685.

  2. Tchurikov N., Krasnov A.N., Ponomarenko N.A., Golova Y.B., Chernov B.K. // Forum domain in Drosophila melanogaster cut locus possesses looped domains inside. Nucleic Acids Res. 1998, 26, 3221–3227.

  3. Tchurikov N.A., Kretova O.V., Fedoseeva D.M., Sosin D.V., Grachev S.A., Serebraykova M.V., Romanenko S.A., Vorobieva N.V., Kravatsky Y.V. // DNA Double-Strand Breaks Coupled with PARP1 and HNRNPA2B1 Binding Sites Flank Coordinately Expressed Domains in Human Chromosomes. PloS Genet. 2013. V. 9. P. e1003429.

  4. Dudás A., Chovanec M. // DNA double-strand break repair by homologous recombination. Mutat Res. 2004. V. 566 (2), 131–167.

  5. Vilenchik M.M., Knudson A.G. // Radiation dose-rate effects, endogenous DNA damage, and signaling resonance. Proc. Natl.Acad. Sci. USA 2006, V. 103. P. 17874–17879.

  6. Tchurikov N.A., Yudkin D.V., Gorbacheva M.A., Kulemzina A.I., Grischenko I.V., Fedoseeva D.M., Sosin D.V., Kravatsky Y.V., Kretova, O.V. // Hot spots of DNA double-strand breaks in human rDNA units are produced in vivo. Sci. Rep. 2016. V. 6. P. 25866.

  7. Rinaldi C., Pizzul P., Longhese M.P., Bonetti D. // Sensing R-Loop-Associated DNA Damage to Safeguard Genome Stability. Front. Cell Dev. Biol. 2021. V. 8. P. 618157.

  8. Roos W.P., Kaina B. // DNA damage-induced cell death by apoptosis. Trends Mol Med. 2006. V. 12. № 9. P. 440–50.

  9. Stempor P., Ahringer J. // SeqPlots–Interactive software for exploratory data analyses, pattern discovery and visualization in genomics. Wellcome Open Res. 2016. V. 1. P. 14.

  10. Martire S., Nguyen J., Sundaresan A. et al. // Differential contribution of p300 and CBP to regulatory element acetylation in mESCs. BMC Mol and Cell Biol. 2020 V. 21. P. 55.

  11. Cheng H., Zhang N., Pati D. // Cohesin subunit RAD21: From biology to disease. Gene. 2020. V. 758, 2020. P. 44966.

  12. Hoffmann A., Roeder R.G. // Cloning and characterization of human TAF20/15. Multiple interactions suggest a central role in TFIID complex formation. J. Biol. Chem. 1996. V. 271 (30). P. 18194–18202.

  13. Yu Y., Reed R. // FUS functions in coupling transcription to splicing by mediating an interaction between RNAP II and U1 snRNP. Proc Natl Acad Sci U S A. 2015. V. 112 (28). P. 8608–8613.

  14. Sun Y., Xu X., Zhao W., Zhang Y., Chen K., Li Y., Wang X., Zhang M., Xue B., Yu W., Hou Y., Wang C., Xie W., Li C., Kong D., Wang S., Sun Y. // RAD21 is the core subunit of the ohesion complex involved in directing genome organization. Genome Biol. 2023. V. 24 (1). P. 155.

  15. Wei S., Li C., Yin Z., Wen J., Meng H., Xue L., Wang J. // Histone methylation in DNA repair and clinical practice: new findings during the past 5-years”. J Cancer. 2018 V. 9 (12). P. 2072–2081.

Дополнительные материалы отсутствуют.